Флоксинг
В генной инженерии флоксинг относится к вставке последовательности ДНК (которая затем называется флоксированной ) между двумя последовательностями LoxP , создавая искусственную кассету генов , которую затем можно условно удалить (выбить), транслоцировать или инвертировать в процессе. называется рекомбинацией Cre-Lox . [1] Рекомбинация между сайтами LoxP катализируется рекомбиназой Cre . Термин «флоксинг» представляет собой комбинацию, образованную от фразы «фланговый/ фланкированный LoxP».
Метод флоксинга имеет важное значение при разработке научных модельных систем, поскольку он позволяет исследователям иметь пространственные и временные изменения экспрессии генов. [2] Система Cre-Lox широко используется для управления экспрессией генов в модельных организмах, таких как мыши, с целью изучения заболеваний человека и разработки лекарств. [3] Например, используя систему Cre-Lox, исследователи могут изучать онкогены и гены- супрессоры опухолей , а также их роль в развитии и прогрессировании рака на моделях мышей. [4]
Использование в исследованиях
[ редактировать ]Флоксирование гена позволяет его удалить (нокаутировать), [5] [6] транслоцирован или вставлен [7] (посредством различных механизмов рекомбинации Cre-Lox).
Флоксинг генов имеет важное значение для разработки научных модельных систем, поскольку он позволяет изменять пространственную и временную экспрессию генов. С точки зрения непрофессионала, ген может быть нокаутирован (инактивирован) в определенной ткани in vivo в определенное время, выбранное ученым. Затем учёный сможет оценить влияние нокаутированного гена и определить его нормальную функцию. [8] Это отличается от отсутствия гена с момента зачатия, при котором инактивация или потеря генов, необходимых для развития организма, может мешать нормальному функционированию клеток и препятствовать производству жизнеспособного потомства. [9]
Механизм удаления
[ редактировать ]События делеции полезны для проведения экспериментов по редактированию генов путем точного удаления сегментов или даже целых генов. Удаление требует флоксирования интересующего сегмента с сайтами loxP, обращенными в том же направлении. Рекомбиназа Cre обнаружит однонаправленные сайты loxP и вырезает фрагментированный сегмент ДНК. [10] Успешно отредактированные клоны можно выбрать с помощью маркера выбора, который можно удалить с помощью той же системы Cre-LoxP. [10] Тот же механизм можно использовать для создания условных аллелей путем введения сайта FRT/Flp , который реализует тот же механизм, но с другим ферментом.
Механизм инверсии
[ редактировать ]События инверсии полезны для инактивации гена или последовательности ДНК без фактического их удаления и, таким образом, для поддержания постоянного количества генетического материала. Инвертированные гены не часто связаны с аномальными фенотипами , а это означает, что инвертированные гены обычно жизнеспособны. [11] Для рекомбинации Cre-LoxP, приводящей к инверсии, требуются сайты loxP, фланкирующие интересующий ген, причем сайты loxP ориентированы друг к другу как инвертированные повторы . Подвергаясь рекомбинации Cre, область, фланкированная сайтами loxP, станет инвертированной, т.е. повторно вставленной в то же положение, но в обратной ориентации; [12] этот процесс не является постоянным и может быть обращен вспять. [13]
Механизм транслокации
[ редактировать ]События транслокации происходят, когда сайты loxP фланкируют гены на двух разных молекулах ДНК в однонаправленной ориентации. Затем рекомбиназа Cre используется для создания транслокации между двумя молекулами ДНК, обменивая генетический материал с одной молекулы ДНК на другую, образуя одновременную транслокацию обоих флоксированных генов. [12] [14]
Общие применения в исследованиях
[ редактировать ]Было показано, что кардиомиоциты (ткань сердечной мышцы) экспрессируют тип рекомбиназы Cre, который очень специфичен для кардиомиоцитов и может использоваться исследователями для выполнения высокоэффективных рекомбинаций. Это достигается за счет использования типа Cre, выражение которого определяется -промотор тяжелой цепи миозина ( -МойХК) . Эти рекомбинации способны разрушать гены способом, специфичным для сердечной ткани in vivo , и позволяют создавать условные нокауты сердца, в основном для использования в качестве контроля. [15] Например, используя рекомбиназу Cre с - Промотор MyHC вызывает инактивацию гена floxed только в сердце. Кроме того, эти нокауты можно сделать индуцируемыми. В нескольких исследованиях на мышах тамоксифен использовался для индукции экспрессии рекомбиназы Cre . [2] В этом случае рекомбиназа Cre слита с частью мышиного рецептора эстрогена (ER), которая содержит мутацию в лиганд-связывающем домене (LBD) . Мутация делает рецептор неактивным, что приводит к неправильной локализации за счет его взаимодействия с белками-шаперонами, такими как белки теплового шока 70 и 90 ( Hsp70 и Hsp90 ). Тамоксифен связывается с Cre-ER и нарушает его взаимодействие с шаперонами, что позволяет слитому белку Cre-ER проникнуть в ядро и выполнить рекомбинацию на флоксированном гене. [16] [17] Кроме того, рекомбиназа Cre может индуцироваться под действием тепла, когда она находится под контролем специфических элементов теплового шока (HSE). [18] [19]
Ссылки
[ редактировать ]- ^ Надь А. (февраль 2000 г.). «Cre-рекомбиназа: универсальный реагент для адаптации генома» . Бытие . 26 (2): 99–109. doi : 10.1002/(SICI)1526-968X(200002)26:2<99::AID-GENE1>3.0.CO;2-B . ПМИД 10686599 . S2CID 2916710 .
- ^ Перейти обратно: а б Хаяши С., МакМахон AP (апрель 2002 г.). «Эффективная рекомбинация в различных тканях с помощью индуцируемой тамоксифеном формы Cre: инструмент для регулируемой во времени активации/инактивации генов у мышей» . Биология развития . 244 (2): 305–18. дои : 10.1006/dbio.2002.0597 . ПМИД 11944939 .
- ^ Генетика мышей: методы и протоколы . Сингх, Шри Рам, Коппола, Винченцо. Нью-Йорк, штат Нью-Йорк. 26 июля 2014 г. ISBN 9781493912155 . OCLC 885338722 .
{{cite book}}
: CS1 maint: отсутствует местоположение издателя ( ссылка ) CS1 maint: другие ( ссылка ) - ^ Грин Дж. Э., Рид Т. (2012). Генетически модифицированные мыши для исследования рака . дои : 10.1007/978-0-387-69805-2 . ISBN 978-0-387-69803-8 . S2CID 40599715 .
- ^ Фридель Р.Х., Вурст В., Веферс Б., Кюн Р. (2011). «Создание мышей с условным нокаутом». Методы и протоколы для трансгенных мышей . Методы молекулярной биологии. Том. 693. стр. 205–31. дои : 10.1007/978-1-60761-974-1_12 . ISBN 978-1-60761-973-4 . ПМИД 21080282 .
- ^ Сакамото К., Гурумурти CB, Вагнер К.У. (2014), Сингх С.Р., Коппола В. (ред.), «Поколение мышей с условным нокаутом», Генетика мышей , Методы молекулярной биологии, том. 1194, Springer New York, стр. 21–35, номер документа : 10.1007/978-1-4939-1215-5_2 , ISBN. 9781493912148 , PMID 25064096
- ^ Имута Ю., Кийонари Х., Чан К.В., Берингер Р.Р., Сасаки Х. (март 2013 г.). «Поколение мышей с нокаутом, которые экспрессируют усиленный ядерным зеленым флуоресцентным белком и индуцируемую тамоксифеном рекомбиназу Cre в хорде из локусов Foxa2 и T» . Бытие . 51 (3): 210–8. дои : 10.1002/dvg.22376 . ПМЦ 3632256 . ПМИД 23359409 .
- ^ Зал B, Лимайе А, Кулкарни AB (сентябрь 2009 г.). «Обзор: поколение мышей с нокаутом генов» . Современные протоколы клеточной биологии . Глава 19: Раздел 19.12 19.12.1–17. дои : 10.1002/0471143030.cb1912s44 . ПМЦ 2782548 . ПМИД 19731224 .
- ^ Родригес Й.В., Шахнович Е.И. (01.08.2019). «Адаптация к мутационной инактивации важного гена E. coli сходится к доступному субоптимальному пику приспособленности» . bioRxiv : 552240. arXiv : 1902.06630 . дои : 10.1101/552240 .
- ^ Перейти обратно: а б Швенк Ф., Барон У., Раевский К. (декабрь 1995 г.). «Кре-трансгенный штамм мышей для повсеместной делеции сегментов гена, окруженных loxP, включая делецию в зародышевых клетках» . Исследования нуклеиновых кислот . 23 (24): 5080–1. дои : 10.1093/нар/23.24.5080 . ПМК 307516 . ПМИД 8559668 .
- ^ Гриффитс А.Дж., Миллер Дж.Х., Сузуки Д.Т., Левонтин Р.К., Гелбарт В.М. (2000). «Инверсии» . Введение в генетический анализ. 7-е издание .
- ^ Перейти обратно: а б Сюй Дж, Чжу Ю (август 2018 г.). «Быстрый метод in vitro для переворачивания двойной перевернутой открытой рамки считывания в плазмиде» . БМК Биотехнология . 18 (1): 52. дои : 10.1186/s12896-018-0462-x . ПМК 6119287 . ПМИД 30170595 .
- ^ Обердерфер П., Отипоби К.Л., Маруяма М., Раевски К. (ноябрь 2003 г.). «Однонаправленная Cre-опосредованная генетическая инверсия у мышей с использованием мутантной пары loxP lox66/lox71» . Исследования нуклеиновых кислот . 31 (22): 140д–140. дои : 10.1093/нар/gng140 . ПМЦ 275577 . ПМИД 14602933 .
- ^ Гриффитс А.Дж., Миллер Дж.Х., Сузуки Д.Т., Левонтин Р.К., Гелбарт В.М. (2000). «Транслокации». Введение в генетический анализ (7-е изд.).
- ^ Пугач Е.К., Ричмонд, Пенсильвания, Азофейфа Дж.Г., Доуэлл Р.Д., Лейнванд Л.А. (сентябрь 2015 г.). «Продолжительная экспрессия Cre, управляемая промотором тяжелой цепи α-миозина, может быть кардиотоксичной» . Журнал молекулярной и клеточной кардиологии . 86 : 54–61. дои : 10.1016/j.yjmcc.2015.06.019 . ПМЦ 4558343 . ПМИД 26141530 .
- ^ Даниелян П.С., Муччино Д., Рович Д.Х., Майкл С.К., МакМахон А.П. (декабрь 1998 г.). «Модификация активности генов у эмбрионов мышей внутриутробно с помощью тамоксифен-индуцируемой формы рекомбиназы Cre» . Современная биология . 8 (24): 1323–6. Бибкод : 1998CBio....8.1323D . дои : 10.1016/s0960-9822(07)00562-3 . ПМИД 9843687 .
- ^ Методы трансгенеза: принципы и протоколы . Кларк, Алан Р. (2-е изд.). Тотова, Нью-Джерси: Humana Press. 2002. ISBN 9781592591787 . OCLC 50175106 .
{{cite book}}
: CS1 maint: другие ( ссылка ) - ^ Рак и рыбки данио: механизмы, методы и модели . Лангенау, Дэвид М. Швейцария. 10 мая 2016 г. ISBN 9783319306544 . OCLC 949668674 .
{{cite book}}
: CS1 maint: отсутствует местоположение издателя ( ссылка ) CS1 maint: другие ( ссылка ) - ^ Кобаяши К., Камей Ю., Киносита М., Черни Т., Танака М. (январь 2013 г.). «Индуцируемая нагреванием система индукции гена CRE/LOXP в Медаке». Бытие . 51 (1): 59–67. дои : 10.1002/dvg.22348 . ПМИД 23019184 . S2CID 25211137 .