Jump to content

in vitro Токсикология

in vitro Тестирование токсичности — это научный анализ токсического воздействия химических веществ на культивируемые бактерии или млекопитающих клетки . [1] Методы тестирования in vitro (буквально «в стекле») используются в первую очередь для выявления потенциально опасных химических веществ и/или для подтверждения отсутствия определенных токсических свойств на ранних стадиях разработки потенциально полезных новых веществ, таких как терапевтические лекарства , сельскохозяйственные химикаты и пищевые добавки.

Анализы in vitro на токсичность ксенобиотиков в последнее время тщательно рассматриваются ключевыми правительственными учреждениями (например, EPA; NIEHS/NTP; FDA), чтобы лучше оценить риски для человека. Ведется значительная работа по использованию систем in vitro для углубления механистического понимания токсического действия, а также по использованию человеческих клеток и тканей для определения токсических эффектов, специфичных для человека. [2]

Улучшение по сравнению с тестированием на животных

[ редактировать ]

Большинство токсикологов считают, что методы тестирования токсичности in vitro могут быть более полезными, более длительными и экономически эффективными, чем токсикологические исследования на живых животных. [3] (которые называются методами in vivo или «в жизни»). Однако экстраполяция от in vitro к in vivo требует тщательного рассмотрения и является активной областью исследований.

Из-за нормативных ограничений и этических соображений поиск альтернатив испытаниям на животных получил новый импульс. Во многих случаях тесты in vitro лучше, чем тесты на животных, поскольку их можно использовать для разработки более безопасных продуктов. [4]

Агентство по охране окружающей среды США изучило 1065 химических и лекарственных веществ в своей программе ToxCast (часть CompTox Chemicals Dashboard ), используя моделирование диоксида кремния человека и анализ на основе плюрипотентных стволовых клеток для прогнозирования интоксикантов, вызывающих развитие in vivo, на основе изменений в клеточном метаболизме после химическое воздействие. Основные результаты анализа этого набора данных ToxCast_STM, опубликованного в 2020 году, включают: (1) 19% из 1065 химических веществ позволили предсказать токсичность для развития , (2) эффективность анализа достигла точности 79–82% с высокой специфичностью (> 84%), но умеренная чувствительность (<67%) по сравнению с моделями пренатальной токсичности для развития человека in vivo на животных, (3) чувствительность улучшалась по мере того, как к исследованиям на животных применялись более строгие требования к доказательствам, и (4) статистический анализ наиболее сильнодействующих химических веществ воздействие на определенные биохимические цели в ToxCast выявило положительные и отрицательные ассоциации с реакцией STM, что дает представление о механистических основах целевой конечной точки и ее биологической области. [5]

96-луночный титрационный микропланшет . Для ELISA используют

Примеры жизнеспособности клеток и других анализов цитотоксичности, используемых для in vitro . токсикологии

[ редактировать ]

Существует множество методов анализа тестируемых веществ на цитотоксичность и другие клеточные реакции.

Анализ гемолиза

[ редактировать ]

Анализ гемолиза проверяет склонность химических веществ, лекарств или медикаментов , а также любого медицинского устройства или материала, контактирующих с кровью, к лизису эритроцитов (эритроцитов). Лизис легко обнаруживается благодаря высвобождению гемоглобина . [6]

МТТ и МТС

[ редактировать ]

Анализ МТТ часто используется для определения жизнеспособности клеток и был одобрен для использования международными организациями. Анализ МТТ включает два этапа введения анализа в химические вещества, а затем этап солюбилизации.

Колориметрический анализ MTS (3-(4,5-диметилтиазол-2-ил)-5-(3-карбоксиметоксифенил ) -2-(4-сульфофенил)-2Hтетразолий) in vitro представляет собой обновленную версию проверенного метода MTT, MTS. Преимущество анализа состоит в его растворимости. Следовательно, стадия солюбилизации не требуется.

анализа АТФ Основное преимущество заключается в быстром получении результатов (в течение 15 минут) и требует лишь меньшего количества клеток-образцов. Анализ осуществляет лизис клеток, и следующая химическая реакция между анализом и содержанием АТФ в клетках приводит к люминесценции. Затем количество люминесценции измеряется фотометром и может быть переведено в числовые ячейки, поскольку

  • Анализ АТФ предполагает, что внутри живых клеток все еще есть АТФ, и
  • Регистрируемый уровень люминесценции пропорционален содержанию АТФ в клетках образца.

Нейтральный красный

[ редактировать ]

Другой конечной точкой жизнеспособности клеток может быть поглощение нейтрального красного (NR). Нейтральный красный, слабый катионный краситель, проникает через клеточные мембраны путем недиффузии и накапливается межклеточно в лизосомах. Жизнеспособные клетки поглощают краситель NR, а поврежденные или мертвые клетки — нет.

Количественное определение цитокинов с помощью ELISA

[ редактировать ]

Наборы ELISA можно использовать для изучения повышения и понижения регуляции провоспалительных медиаторов, таких как цитокины (IL-1, TNF-альфа, PGE2).

Измерение этих типов клеточных ответов может быть окном во взаимодействие тестируемого образца с тестовыми моделями (монослойные клеточные культуры, 3D-модели тканей, эксплантаты тканей).

Виды in vitro исследований

[ редактировать ]

Вообще говоря, существует два разных типа исследований in vitro в зависимости от системы типов, разработанной для проведения эксперимента. Обычно используются два типа систем: а) система статических луночных планшетов и б) многокамерные перфузионные системы.

Статическая система луночных планшетов

[ редактировать ]

Статические луночные планшеты или системы слоев являются наиболее традиционной и простой формой анализа, широко используемой для исследований in vitro. Эти анализы весьма полезны, поскольку они довольно просты и обеспечивают очень доступную среду тестирования для мониторинга химических веществ в культуральной среде, а также в клетках. Однако недостатком использования этих простых статических луночных анализов является то, что они не могут отображать клеточные взаимодействия и условия физиологического потока жидкости, происходящие внутри организма.

Многокамерные перфузионные системы

[ редактировать ]

В настоящее время разрабатываются новые платформы тестирования для решения проблем, связанных с клеточными взаимодействиями. Эти новые платформы гораздо более сложны и основаны на многокамерных перфузионных системах. [7] Основная цель этих систем — более надежно воспроизводить механизмы in vivo, обеспечивая среду культуры клеток, близкую к ситуации in vivo. Каждый отсек в системе представляет собой определенный орган живого организма и, таким образом, каждый отсек имеет определенные характеристики и критерии. Каждый отсек в этих системах соединен трубками и насосами, через которые течет жидкость, имитируя кровоток в ситуации in vivo. Недостатком использования этих перфузионных систем является то, что побочные эффекты (влияние как биологических, так и небиологических компонентов системы на судьбу изучаемого химического вещества) больше по сравнению со статическими системами. Чтобы снизить воздействие небиологических компонентов системы, все отсеки выполнены из стекла, а соединительные трубки — из тефлона. Был предложен ряд кинетических моделей, позволяющих учесть эти неспецифические связывания, происходящие в этих системах in vitro. [8]

Чтобы решить биологические трудности, возникающие при использовании различных культур в условиях in vitro, необходимо модифицировать традиционные модели, используемые в колбах или планшетах с микролунками. При параллельном развитии микротехнологий и тканевой инженерии эти проблемы решаются с использованием новых соответствующих инструментов, называемых «микрофлюидными биочипами». [9]

  1. ^ Гаванджи С., Бахтари А., Фамурева А.С., Отман Э.М. (январь 2023 г.). «Цитотоксическая активность растительных лекарственных средств, оцененная in vitro: обзор» . Химия и биоразнообразие . 20 (2): 3–27. дои : 10.1002/cbdv.202201098 . ПМИД   36595710 . S2CID   255473013 .
  2. ^ «Токс21» . Источник: Агентство по охране окружающей среды США . Проверено 29 октября 2011 г.
  3. ^ Махони, Кэтрин; Эштон, Рэндольф С.; Бирк, Барбара; Бубис, Алан Р.; Калл, Том; Дастон, Джордж П.; Юарт, Лорна; Кнудсен, Томас Б.; Ману, Ирен; Маурер-Штро, Себастьян; Марджотта-Касалучи, Луиджи (июль 2020 г.). «Новые идеи неживотных подходов к прогнозированию системной токсичности при повторных дозах: отчет семинара EPAA Blue Sky» . Нормативная токсикология и фармакология . 114 : 104668. doi : 10.1016/j.yrtph.2020.104668 . ПМИД   32335207 .
  4. ^ «Видение и дорожная карта XXI века» . Источник: Национальная программа токсикологии . Проверено 29 октября 2011 г.
  5. ^ Зурлинден, Ти Джей; Сайли, Канзас; Раш, Н; Котия, П; Джадсон, РС; Хоук, Калифорния; Хантер, ES; Бейкер, Северная Каролина; Палмер, Дж.А.; Томас, РС; Кнудсон, ТБ (2020). «Профилирование библиотеки ToxCast с помощью анализа биомаркеров на основе линий стволовых клеток человека (H9) на токсичность для развития» . Токсикологические науки . 174 (2): 189–209. дои : 10.1093/toxsci/kfaa014 . ПМЦ   8527599 . ПМИД   32073639 .
  6. ^ Сэбё П.И., Бьорос М., Франзик Х., Хельгенсен Э., Бут Дж. (2 февраля 2023 г.). «Оптимизация анализа гемолиза для оценки цитотоксичности» . Межд. Дж. Мол. Наука . 24 (3): 2914. doi : 10.3390/ijms24032914 . ПМЦ   9917735 . ПМИД   36769243 .
  7. ^ Леклерк Э.; Сакаи Ю.; Фуджи Т. (2004). «Перфузионная культура гепатоцитов плода человека в микрофлюидной среде». Журнал биохимической инженерии . 20 (2–3): 143–148. дои : 10.1016/j.bej.2003.09.010 .
  8. ^ Уаттара Д.А.; Цой С.-Х.; Сакаи Ю.; Пери АРР; Брошо К. (2011). «Кинетическое моделирование клеточных анализов in vitro для характеристики неспецифических связываний и процессов ADME в статической и перфузируемой жидкостной системе». Письма по токсикологии . 205 (3): 310–319. дои : 10.1016/j.toxlet.2011.06.021 . ПМИД   21723928 .
  9. ^ Бодуэн Р.; Чорлу А.; Гриском Л.; Легале К.; Леклерк Э. (2007). «Тенденции в разработке микрофлюидных клеточных биочипов для борьбы с гепатотоксичностью in vitro». Токсикология in vitro . 21 (4): 535–544. дои : 10.1016/j.tiv.2006.11.004 . ПМИД   17188836 .
Arc.Ask3.Ru: конец переведенного документа.
Arc.Ask3.Ru
Номер скриншота №: 5a95bb74e1e3c6428db8da45b114b28c__1712419860
URL1:https://arc.ask3.ru/arc/aa/5a/8c/5a95bb74e1e3c6428db8da45b114b28c.html
Заголовок, (Title) документа по адресу, URL1:
In vitro toxicology - Wikipedia
Данный printscreen веб страницы (снимок веб страницы, скриншот веб страницы), визуально-программная копия документа расположенного по адресу URL1 и сохраненная в файл, имеет: квалифицированную, усовершенствованную (подтверждены: метки времени, валидность сертификата), открепленную ЭЦП (приложена к данному файлу), что может быть использовано для подтверждения содержания и факта существования документа в этот момент времени. Права на данный скриншот принадлежат администрации Ask3.ru, использование в качестве доказательства только с письменного разрешения правообладателя скриншота. Администрация Ask3.ru не несет ответственности за информацию размещенную на данном скриншоте. Права на прочие зарегистрированные элементы любого права, изображенные на снимках принадлежат их владельцам. Качество перевода предоставляется как есть. Любые претензии, иски не могут быть предъявлены. Если вы не согласны с любым пунктом перечисленным выше, вы не можете использовать данный сайт и информация размещенную на нем (сайте/странице), немедленно покиньте данный сайт. В случае нарушения любого пункта перечисленного выше, штраф 55! (Пятьдесят пять факториал, Денежную единицу (имеющую самостоятельную стоимость) можете выбрать самостоятельно, выплаичвается товарами в течение 7 дней с момента нарушения.)