Jump to content

Каллус (клеточная биология)

Каллюс растений (множественное число каллусов или каллусов ) представляет собой растущую массу неорганизованных клеток паренхимы растения . У живых растений каллусные клетки — это клетки, покрывающие рану растения. В биологических исследованиях и биотехнологиях образование каллуса индуцируется из образцов растительной ткани (эксплантов) после поверхностной стерилизации и высева на среду для культуры ткани in vitro (в закрытом культуральном сосуде, таком как чашка Петри ). [1] В культуральную среду добавляют регуляторы роста растений , такие как ауксин , цитокинин и гиббереллин , для инициации образования каллуса или соматического эмбриогенеза . Зарождение каллуса описано для всех основных групп наземных растений.

Nicotiana tabacum в культуре Клетки паренхимы

Индукция каллуса и культура тканей

[ редактировать ]
Клетки каллуса формируются в ходе процесса, называемого «индукцией» у Pteris vittata.

Было показано, что виды растений, представляющие все основные группы наземных растений, способны производить каллус в культуре тканей. [2] [3] [4] [5] [6] [7] [8] [9] [10] [11] [12] Культуру клеток каллуса обычно поддерживают на гелевой среде. Среда для индукции каллуса состоит из агара и смеси макро- и микроэлементов для данного типа клеток. Существует несколько типов смесей базальных солей, используемых в культуре тканей растений, но наиболее известны модифицированные среды Мурасиге и Скуга . [13] среда белого, [14] и древеснорастительная среда. [15] Витамины, такие как витамины Гамборга B5 , [16] также предоставляются для ускорения роста. Для растительных клеток обогащение азотом , фосфором и калием особенно важно . Каллюс растений обычно происходит из соматических тканей. Ткани, используемые для инициирования образования каллуса, зависят от вида растения и от того, какие ткани доступны для культуры эксплантатов . Клетки, дающие начало каллусу и соматическим эмбрионам, обычно подвергаются быстрому делению или частично недифференцированы, как, например, меристематическая ткань. Однако у люцерны ( Medicago truncatula ) каллус и соматические зародыши происходят из клеток мезофилла , которые подвергаются дедифференцировке . [17] Растительные гормоны используются для инициации роста каллуса. После образования каллуса концентрацию гормонов в среде можно изменить, чтобы сместить развитие от каллуса к образованию корней, росту побегов или соматическому эмбриогенезу. Затем ткань каллуса подвергается дальнейшему росту и дифференцировке клеток, образуя зачатки соответствующих органов. Полностью развитые органы затем можно использовать для регенерации новых зрелых растений.

Каллус, индуцированный Pteris vittata гаметофитами

Морфология

[ редактировать ]

Определенные соотношения ауксина и цитокинина в среде культуры тканей растений приводят к неорганизованному росту и делению массы каллусных клеток. Каллусные культуры часто разделяют на компактные и рыхлые. Компактные каллусы обычно зеленые и прочные, тогда как рыхлые каллусы имеют цвет от белого до кремово-желтого, легко распадаются и могут использоваться для создания клеточных суспензионных культур и соматических эмбрионов. У кукурузы эти два типа каллуса обозначаются как тип I (компактный) и тип II (рыхлый). [18] Каллус может непосредственно подвергаться прямому органогенезу и/или эмбриогенезу , при котором клетки образуют совершенно новое растение.

Гибель клеток каллуса

[ редактировать ]

Каллус может потемнеть и погибнуть во время культивирования, в основном из-за окисления фенольных соединений . В Jatropa curcas мелкие организованные каллусные клетки становились дезорганизованными и менялись по размеру после того, как произошло потемнение. каллусных клетках [19] Потемнение также связано с окислением и фенольными соединениями как в тканях эксплантата, так и в секретах эксплантата. [20] По-видимому, у риса условия, благоприятные для индукции щиткового каллуса, также вызывают некроз. [21]

Использование

[ редактировать ]

Клетки каллуса не обязательно генетически однородны, поскольку каллус часто состоит из структурной ткани, а не из отдельных клеток. [ нужны разъяснения ] Тем не менее, клетки каллуса часто считаются достаточно похожими, чтобы можно было проводить стандартный научный анализ, как если бы на одном объекте. Например, в ходе эксперимента половина каллуса может подвергаться лечению в качестве экспериментальной группы , а другая половина подвергается аналогичному, но неактивному лечению, как в контрольной группе .

Каллюсы растений, полученные из разных типов клеток, могут дифференцироваться в целое растение (процесс, называемый регенерацией), за счет добавления растительных гормонов в культуральную среду. Эта способность известна как тотипотентность . Классический эксперимент Фолке Скуга и Карлоса О. Миллера с сердцевиной табака, используемой в качестве исходного эксплантата, показывает, что добавление в культуральную среду концентраций ауксина и цитокинина с различными соотношениями концентраций ауксина и цитокинина индуцирует образование корней – при более высоком соотношении ауксина к цитокинину происходит укоренение ( ризогенез), применение равных количеств обоих гормонов стимулирует дальнейший рост каллуса, а увеличение соотношения ауксина и цитокинина в пользу цитокинина приводит к развитию побегов. [22] Регенерация целого растения из одной клетки позволяет исследователям- трансгенистам получать целые растения, в каждой клетке которых есть копия трансгена. Регенерация целого растения, содержащего несколько генетически трансформированных клеток и часть нетрансформированных клеток, дает химеру . В целом химеры бесполезны для генетических исследований или сельскохозяйственного применения.

Гены могут быть вставлены в клетки каллуса с помощью биолистической бомбардировки , также известной как генная пушка , или Agrobacterium tumefaciens . Клетки, которые получают интересующий ген, затем могут быть восстановлены в целые растения с помощью комбинации растительных гормонов . Целые растения, которые будут восстановлены, могут быть использованы для экспериментального определения функций генов или для улучшения характеристик сельскохозяйственных культур для современного сельского хозяйства.

Каллус особенно полезен при микроразмножении , где его можно использовать для выращивания генетически идентичных копий растений с желаемыми характеристиками. Чтобы повысить урожайность, эффективность и выживаемость эксплантатов при микроразмножении, тщательное внимание уделяется оптимизации протокола микроразмножения. Например, использование эксплантов, состоящих из клеток с низкой тотипотентностью, может продлить время, необходимое для получения каллуса достаточного размера, увеличивая общую продолжительность эксперимента. Аналогичным образом, различные виды растений и типы эксплантов требуют определенных растительных гормонов для индукции каллуса и последующего органогенеза или эмбриогенеза - для образования и роста каллусов кукурузы ауксин 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-D) превосходил 1-нафталинуксусную кислоту. кислотой (НАК) или индол-3-уксусной кислотой (ИУК), тогда как в эксплантатах чернослива тормозилось развитие каллуса после применения ауксина индол-3-масляной кислоты (ИБК), но не ИУК. [23] [24]

Анри-Луи Дюамель дю Монсо исследовал реакцию заживления ран у вязов и первым сообщил об образовании каллуса на живых растениях. [25]

В 1908 г. Э. Ф. Симону удалось вызвать каллус из стеблей тополя, который также дал корни и почки. [26] Первые сообщения об индукции каллюса in vitro поступили от трех независимых исследователей в 1939 году. [27] P. Каллюс, индуцированный Уайтом, полученный из опухолевидных прокамбиальных тканей гибрида Nicotiana glauca , не требующий гормональных добавок. [14] Готре и Нобекур смогли сохранить каллусные культуры моркови, используя добавки гормона ауксина. [ нужна ссылка ]

См. также

[ редактировать ]
  1. ^ Что такое культура растительных тканей?
  2. ^ Такеда, Рейджи; Като, Кенджи (1981). «Рост и продукция сесквитерпеноидов иноутными клетками Calypogeia granulata в суспензионной культуре». Планта . 151 (6): 525–530. Бибкод : 1981Завод.151..525Т . дои : 10.1007/BF00387429 . ПМИД   24302203 . S2CID   21074846 .
  3. ^ Петерсон, М. (2003). «4-гидроксилаза коричной кислоты из культуры клеток роголистника Anthoceros agrestis ». Планта . 217 (1): 96–101. Бибкод : 2003Завод.217...96П . дои : 10.1007/s00425-002-0960-9 . ПМИД   12721853 . S2CID   751110 .
  4. ^ Бойтельманн, П.; Бауэр, Л. (1 января 1977 г.). «Очистка и идентификация цитокинина из клеток каллуса мха». Планта . 133 (3): 215–217. Бибкод : 1977Завод.133..215Б . дои : 10.1007/BF00380679 . ПМИД   24425252 . S2CID   34814574 .
  5. ^ Атмане, Н. (2000). «Гистологический анализ непрямого соматического эмбриогенеза болотного плауна Lycopodiella inundata (L.) Holub (Pteridophytes)». Наука о растениях . 156 (2): 159–167. дои : 10.1016/S0168-9452(00)00244-2 . ПМИД   10936522 .
  6. ^ Ян, Сюэси; Чен, Хуэй; Сюй, Вэньчжун; Он, Женьян; Ма, Ми (2007). «Гипераккумуляция мышьяка каллусами, спорофитами и гаметофитами Pteris vittata, культивируемыми in vitro ». Отчеты о растительных клетках . 26 (10): 1889–1897. дои : 10.1007/s00299-007-0388-6 . ПМИД   17589853 . S2CID   20891091 .
  7. ^ Чавес, В.М.; Литц, Р.Э.; Монрой, М.; Мун, Пенсильвания; Вовидес, AM (1998). «Регенерация растений Ceratozamia euryphyllidia (Cycadales, Gymnospermae) из эмбриогенных листовых культур, полученных от деревьев зрелой фазы». Отчеты о растительных клетках . 17 (8): 612–616. дои : 10.1007/s002990050452 . ПМИД   30736513 . S2CID   29050747 .
  8. ^ Чон, МиХи; Сон, СанХён; Ха, Хун; Ким, ЁнгЧунг (1995). «Продуцирование гинкголида B в культивируемых клетках, полученных из листьев Ginkgo biloba L.». Отчеты о растительных клетках . 14 (8): 501–504. дои : 10.1007/BF00232783 . ПМИД   24185520 . S2CID   20826665 .
  9. ^ Файнер, Джон Дж.; Крибель, Ховард Б.; Беквар, Майкл Р. (1 января 1989 г.). «Инициирование эмбриогенных каллусных и суспензионных культур сосны белой восточной ( Pinus strobus L. )». Отчеты о растительных клетках . 8 (4): 203–206. дои : 10.1007/BF00778532 . ПМИД   24233136 . S2CID   2578876 .
  10. ^ О'Дауд, Ниам А.; МакКоли, Патрик Г.; Ричардсон, Дэвид Х.С.; Уилсон, Грэм (1993). «Производство каллуса, суспензионная культура и in vitro выход алкалоидов эфедры ». Культура растительных клеток, тканей и органов . 34 (2): 149–155. дои : 10.1007/BF00036095 . S2CID   25019305 .
  11. ^ Чен, Ин-Чун; Чанг, Чен; Чанг, Вэй-чин (2000). «Надежный протокол регенерации растений из каллусной культуры фаленопсиса». Клеточная биология и биология развития in vitro — растения . 36 (5): 420–423. дои : 10.1007/s11627-000-0076-5 . S2CID   30272969 .
  12. ^ Беррис, Джейсон Н.; Манн, Дэвид Дж.Дж.; Джойс, Блейк Л.; Стюарт, К. Нил (10 октября 2009 г.). «Улучшенная система культуры тканей для производства эмбриогенного каллуса и регенерации растений проса проса ( Panicum virgatum L. )». Биоэнергетические исследования . 2 (4): 267–274. Бибкод : 2009BioER...2..267B . дои : 10.1007/s12155-009-9048-8 . S2CID   25527007 .
  13. ^ Мурасиге, Тосио; Ф. Скуг (июль 1962 г.). «Пересмотренная среда для быстрого роста и биоанализов с культурами тканей табака». Физиология Плантарум . 15 (3): 473–497. дои : 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x . S2CID   84645704 .
  14. ^ Jump up to: а б Уайт, PR (февраль 1939 г.). «Потенциально неограниченный рост каллуса вырезанных растений в искусственном питательном веществе». Американский журнал ботаники . 26 (2): 59–4. дои : 10.2307/2436709 . JSTOR   2436709 .
  15. ^ Ллойд, Дж; Б. МакКаун (1981). «Коммерчески целесообразное микроразмножение лавра горного Kalmia latifolia с использованием культуры верхушек побегов» . Объединенные труды Международного общества селекционеров растений . 30 : 421–427.
  16. ^ Гамборг, OL; Р. А. Миллер; К. Одзима (апрель 1968 г.). «Потребность в питательных веществах суспензионных культур клеток корня сои». Экспериментальные исследования клеток . 50 (1): 151–158. дои : 10.1016/0014-4827(68)90403-5 . ПМИД   5650857 .
  17. ^ Ван, X.-D.; Нолан, Кентукки; Ирванто, РР; Шихан, МБ; Роуз, Р.Дж. (10 января 2011 г.). «Онтогенез эмбриогенного каллуса Medicago truncatula: судьба плюрипотентных и тотипотентных стволовых клеток» . Анналы ботаники . 107 (4): 599–609. дои : 10.1093/aob/mcq269 . ПМК   3064535 . ПМИД   21224270 .
  18. ^ Сидоров Владимир; Гилбертсон, Ларри; Аддаэ, принц; Дункан, Дэвид (апрель 2006 г.). «Агробактериальная трансформация каллуса кукурузы, полученного из проростков» . Отчеты о растительных клетках . 25 (4): 320–328. дои : 10.1007/s00299-005-0058-5 . ISSN   0721-7714 . ПМИД   16252091 . S2CID   22588581 .
  19. ^ Он, Ян; Го, Сюлянь; Лу, Ран; Ню, Бэй; Пасапула, Виджая; Хоу, Пей; Цай, Фэн; Сюй, Ин; Чен, Фанг (2009). «Изменения морфологии и биохимических показателей побуревшего каллуса, полученного из гипокотилей Jatropa curcas». Культура растительных клеток, тканей и органов . 98 (1): 11–17. дои : 10.1007/s11240-009-9533-y . S2CID   44470975 .
  20. ^ Дэн, Инхуэй; Армстронг, Чарльз Л.; Донг, Джимми; Фэн, Сяорун; Фрай, Джойс Э.; Кейтли, Грег Э.; Мартинелл, Брайан Дж.; Робертс, Гейл А.; Смит, Лори А.; Тан, Лалейн Дж.; Дункан, Дэвид Р. (2009). «Липоевая кислота — [ sic ] уникальный усилитель трансформации растений». Клеточная биология и биология развития in vitro — растения . 45 (6): 630–638. дои : 10.1007/s11627-009-9227-5 . S2CID   19424435 .
  21. ^ Пазуки, Арман и Сохани, Мехди (2013). «Фенотипическая оценка каллусов, полученных из щитков, у сортов риса Индика» (PDF) . Acta Agriculturae Slovenica . 101 (2): 239–247. дои : 10.2478/acas-2013-0020 . Проверено 2 февраля 2014 г.
  22. ^ Скуг, Ф.; Миллер, Колорадо (1957). «Химическая регуляция роста и органообразования в тканях растений, культивируемых in vitro» . Симпозиумы Общества экспериментальной биологии . 11 : 118–130. ISSN   0081-1386 . ПМИД   13486467 .
  23. ^ Шеридан, Уильям Ф. (1975). «Тканевая культура кукурузы I. Индукция и рост каллуса» . Физиология Плантарум . 33 (2): 151–156. дои : 10.1111/j.1399-3054.1975.tb03783.x . ISSN   1399-3054 .
  24. ^ Штефанчич, Матея; Штампар, Франси; Остерк, Грегор (1 декабря 2005 г.). «Влияние IAA и IBA на развитие корней и качество листовых черенков Prunus 'GiSelA 5'» . ХортСайенс . 40 (7): 2052–2055. doi : 10.21273/HORTSCI.40.7.2052 . ISSN   0018-5345 .
  25. ^ Раздан, МК (2003). Введение в культуру тканей растений (2-е изд.). Энфилд, Нью-Хэмпшир [ua]: Oxford Publishers. ISBN  1-57808-237-4 .
  26. ^ Готре, Роджер Дж. (1 декабря 1983 г.). «Культура растительных тканей: история». Ботанический журнал Токио . 96 (4): 393–410. дои : 10.1007/BF02488184 . S2CID   26425105 .
  27. ^ Чавла, HS (2002). Введение в биотехнологию растений (2-е изд.). Энфилд, Нью-Хэмпшир: Научные издательства. ISBN  1-57808-228-5 .
Arc.Ask3.Ru: конец переведенного документа.
Arc.Ask3.Ru
Номер скриншота №: e397a42c7d04e211dd4b72a954297671__1708308780
URL1:https://arc.ask3.ru/arc/aa/e3/71/e397a42c7d04e211dd4b72a954297671.html
Заголовок, (Title) документа по адресу, URL1:
Callus (cell biology) - Wikipedia
Данный printscreen веб страницы (снимок веб страницы, скриншот веб страницы), визуально-программная копия документа расположенного по адресу URL1 и сохраненная в файл, имеет: квалифицированную, усовершенствованную (подтверждены: метки времени, валидность сертификата), открепленную ЭЦП (приложена к данному файлу), что может быть использовано для подтверждения содержания и факта существования документа в этот момент времени. Права на данный скриншот принадлежат администрации Ask3.ru, использование в качестве доказательства только с письменного разрешения правообладателя скриншота. Администрация Ask3.ru не несет ответственности за информацию размещенную на данном скриншоте. Права на прочие зарегистрированные элементы любого права, изображенные на снимках принадлежат их владельцам. Качество перевода предоставляется как есть. Любые претензии, иски не могут быть предъявлены. Если вы не согласны с любым пунктом перечисленным выше, вы не можете использовать данный сайт и информация размещенную на нем (сайте/странице), немедленно покиньте данный сайт. В случае нарушения любого пункта перечисленного выше, штраф 55! (Пятьдесят пять факториал, Денежную единицу (имеющую самостоятельную стоимость) можете выбрать самостоятельно, выплаичвается товарами в течение 7 дней с момента нарушения.)