Jump to content

Флуоресцентный микроскоп

(Перенаправлено из флуоресцентной микроскопии )

Вертикальный флуоресцентный микроскоп (Olympus BX61) с турелью кубического фильтра флуоресценции над линзами объектива в сочетании с цифровой камерой.
Продолжительность: 2 минуты 42 секунды. Доступны субтитры.
Принцип действия флуоресцентных и конфокальных микроскопов

Флуоресцентный микроскоп — это оптический микроскоп , который использует флуоресценцию вместо или в дополнение к рассеянию , отражению , затуханию или поглощению для изучения свойств органических или неорганических веществ. [ 1 ] [ 2 ] «Флуоресцентный микроскоп» относится к любому микроскопу, который использует флуоресценцию для создания изображения, будь то простая установка, такая как эпифлуоресцентный микроскоп, или более сложная конструкция, такая как конфокальный микроскоп , который использует оптические срезы для получения лучшего разрешения флуоресцентного изображения. . [ 3 ]

Образец освещается светом определенной длины волны (или длин волн), который поглощается флуорофорами , заставляя их излучать свет с более длинными волнами (т. е. другого цвета, чем поглощаемый свет). Свет освещения отделяется от гораздо более слабой излучаемой флуоресценции с помощью спектрального фильтра излучения. Типичными компонентами флуоресцентного микроскопа являются источник света ( распространены ксеноновая дуговая или ртутная лампа ; более совершенные формы — мощные светодиоды и лазеры ), фильтр возбуждения , дихроичное зеркало (или дихроичный светоделитель ) и излучающий фильтр (см. рисунок ниже). Фильтры и дихроичный светоделитель выбираются в соответствии со спектральными характеристиками возбуждения и излучения флуорофора, используемого для маркировки образца. [ 1 ] Таким образом, одновременно визуализируется распределение одного флуорофора (цвета). Многоцветные изображения нескольких типов флуорофоров необходимо составлять путем объединения нескольких одноцветных изображений. [ 1 ]

Большинство используемых флуоресцентных микроскопов являются эпифлуоресцентными микроскопами, в которых возбуждение флуорофора и обнаружение флуоресценции осуществляются через один и тот же путь света (т.е. через объектив). Эти микроскопы широко используются в биологии и являются основой для более совершенных конструкций микроскопов, таких как конфокальный микроскоп и флуоресцентный микроскоп полного внутреннего отражения (TIRF).

Эпифлуоресцентная микроскопия

[ редактировать ]
Схема флуоресцентного микроскопа.

Большинство флуоресцентных микроскопов, особенно тех, которые используются в науках о жизни , имеют эпифлуоресцентную конструкцию, показанную на схеме. Свет с длиной волны возбуждения освещает образец через объектив . Флуоресценция , излучаемая образцом, фокусируется на детекторе с помощью того же объектива, который используется для возбуждения; для большего разрешения потребуется объектив с более высокой числовой апертурой . Поскольку большая часть возбуждающего света проходит через образец, только отраженный возбуждающий свет достигает объектива вместе с испускаемым светом, и поэтому метод эпифлуоресценции обеспечивает высокое соотношение сигнал/шум. Дихроичный светоделитель действует как фильтр с определенной длиной волны, пропуская флуоресцентный свет к окуляру или детектору, но отражая любой оставшийся возбуждающий свет обратно к источнику. [ нужна ссылка ]

Источники света

[ редактировать ]

Флуоресцентная микроскопия требует интенсивного, почти монохроматического освещения, которое не могут обеспечить некоторые широко распространенные источники света, такие как галогенные лампы . [ 4 ] Используются четыре основных типа источников света, в том числе ксеноновые дуговые лампы или ртутные лампы с фильтром возбуждения , лазеры , источники суперконтинуума и мощные светодиоды . Лазеры наиболее широко используются для более сложных методов флуоресцентной микроскопии, таких как конфокальная микроскопия и флуоресцентная микроскопия полного внутреннего отражения, в то время как ксеноновые лампы, ртутные лампы и светодиоды с дихроичным фильтром возбуждения обычно используются для широкопольных эпифлуоресцентных микроскопов. Поместив две матрицы микролинз на путь освещения широкопольного эпифлуоресцентного микроскопа, [ 5 ] высокой равномерности освещения с коэффициентом вариации можно добиться 1-2%.

Подготовка проб

[ редактировать ]
Продолжительность: 20 секунд.
3D-анимация диатомовой водоросли Corethron sp.
Отображает наложения четырех флуоресцентных каналов.
(а) Зеленый: [флуоресценция DiOC6(3)] - окрашивает клеточные мембраны, указывая на ядра клеток.
(b) Голубой: [флуоресценция PLL-A546] - общий контрастный краситель для визуализации поверхностей эукариотических клеток.
(в) Синий: [флуоресценция Хехста] - окрашивает ДНК, идентифицирует ядра.
(d) Красный: [автофлуоресценция хлорофилла] - расщепляет хлоропласты. [ 6 ]
Анимация начинается с наложения всех доступных флуоресцентных каналов, а затем уточняет визуализацию путем включения и выключения каналов.
Образец сельди спермы , окрашенный зеленым SYBR, в кювете, освещенной синим светом в эпифлуоресцентном микроскопе. Зеленый SYBR в образце связывается с ДНК спермы сельди и после связывания флуоресцирует, излучая зеленый свет при освещении синим светом.

Чтобы образец был пригоден для флуоресцентной микроскопии, он должен быть флуоресцентным. Существует несколько методов создания флуоресцентного образца; Основными методами являются маркировка флуоресцентными красителями или, в случае биологических образцов, экспрессия флуоресцентного белка . собственную флуоресценцию образца (т.е. автофлуоресценцию ). Альтернативно можно использовать [ 1 ] В науках о жизни флуоресцентная микроскопия является мощным инструментом, позволяющим специфично и чувствительно окрашивать образец с целью обнаружения распределения белков или других представляющих интерес молекул. В результате существует широкий спектр методов флуоресцентного окрашивания биологических образцов. [ нужна ссылка ]

Биологические флуоресцентные красители

[ редактировать ]

Многие флуоресцентные красители были разработаны для целого ряда биологических молекул. Некоторые из них представляют собой небольшие молекулы, которые по своей природе флуоресцентны и связывают интересующую биологическую молекулу. Основными примерами являются пятна нуклеиновых кислот , такие как DAPI и Hoechst (возбуждаемые ультрафиолетовым светом), а также DRAQ5 и DRAQ7 (оптимально возбуждаемые красным светом), которые связывают малую бороздку ДНК , маркируя таким образом ядра клеток. Другие представляют собой лекарства, токсины или пептиды, которые связывают определенные клеточные структуры и были получены с помощью флуоресцентного репортера. Основным примером этого класса флуоресцентных красителей является фаллоидин , который используется для окрашивания актиновых волокон в млекопитающих клетках . Новый пептид, известный как гибридизирующий пептид коллагена , также можно конъюгировать с флуорофорами и использовать для окрашивания денатурированных коллагеновых волокон. Окрашивание стенок растительных клеток производят красителями или красителями, связывающими целлюлозу или пектин . Поиск флуоресцентных зондов с высокой специфичностью, которые также позволяют получать живые изображения растительных клеток, продолжается. [ 7 ]

Существует множество флуоресцентных молекул, называемых флуорофорами или флуорохромами, таких как флуоресцеин , Alexa Fluors или DyLight 488 , которые могут быть химически связаны с другой молекулой, которая связывает интересующую мишень в образце.

Иммунофлуоресценция

[ редактировать ]

Иммунофлуоресценция — это метод, который использует высокоспецифическое связывание антитела с его антигеном для маркировки определенных белков или других молекул внутри клетки. Образец обрабатывают первичным антителом, специфичным к интересующей молекуле. Флуорофор можно напрямую конъюгировать с первичным антителом. Альтернативно можно использовать вторичное антитело , конъюгированное с флуорофором, которое специфически связывается с первым антителом. Например, первичное антитело, полученное у мыши и распознающее тубулин , в сочетании со вторичным антимышиным антителом, полученным с помощью флуорофора, можно использовать для мечения микротрубочек в клетке. [ нужна ссылка ]

Флуоресцентные белки

[ редактировать ]

Современное понимание генетики и методы, доступные для модификации ДНК, позволяют ученым генетически модифицировать белки, чтобы они также содержали флуоресцентный белок-репортер. В биологических образцах это позволяет ученым напрямую сделать интересующий белок флуоресцентным. Затем местоположение белка можно будет напрямую отслеживать, в том числе в живых клетках.

Ограничения

[ редактировать ]

Флуорофоры теряют способность флуоресцировать при освещении в процессе, называемом фотообесцвечиванием . Фотообесцвечивание происходит, когда флуоресцентные молекулы накапливают химические повреждения от электронов, возбужденных во время флуоресценции. Фотообесцвечивание может существенно ограничить время, в течение которого образец можно наблюдать с помощью флуоресцентной микроскопии. Существует несколько методов уменьшения фотообесцвечивания, таких как использование более надежных флуорофоров, минимизация освещения или использование фотозащитных химикатов- поглотителей . [ нужна ссылка ]

Флуоресцентная микроскопия с флуоресцентными репортерными белками позволила анализировать живые клетки с помощью флуоресцентной микроскопии, однако клетки чувствительны к фототоксичности, особенно коротковолновому свету. Кроме того, флуоресцентные молекулы имеют тенденцию генерировать химически активные соединения при освещении, что усиливает фототоксический эффект. [ нужна ссылка ]

В отличие от методов микроскопии в проходящем и отраженном свете, флуоресцентная микроскопия позволяет наблюдать только определенные структуры, помеченные для флуоресценции. Например, наблюдение образца ткани, приготовленного с помощью флуоресцентного окрашивания ДНК, с помощью флуоресцентной микроскопии выявляет только организацию ДНК внутри клеток и ничего больше не говорит о морфологии клеток.

Вычислительные методы, которые предлагают оценивать флуоресцентный сигнал по нефлуоресцентным изображениям (например, светлому полю), могут уменьшить эти проблемы. [ 8 ] В целом эти подходы включают обучение глубокой сверточной нейронной сети на окрашенных клетках и последующую оценку флуоресценции на неокрашенных образцах. Таким образом, отделив исследуемые клетки от клеток, используемых для обучения сети, визуализацию можно выполнять быстрее и с меньшей фототоксичностью.

Методы субдифракции

[ редактировать ]

Волновая природа света ограничивает размер пятна, в которое может быть сфокусирован свет, из-за дифракционного предела . Это ограничение было описано в 19 веке Эрнстом Аббе и «ограничивает разрешение оптического микроскопа примерно половиной длины волны используемого света». Флуоресцентная микроскопия занимает центральное место во многих методах, целью которых является преодоление этого предела с помощью специализированных оптических конфигураций. [ нужна ссылка ]

В 20 веке было изобретено несколько усовершенствований в методах микроскопии, которые в некоторой степени привели к увеличению разрешения и контрастности. Однако они не преодолели дифракционный предел. В 1978 году были разработаны первые теоретические идеи, позволяющие преодолеть этот барьер путем использования микроскопа 4Pi в качестве конфокального лазерного сканирующего флуоресцентного микроскопа, где свет идеально фокусируется со всех сторон в общий фокус, который используется для сканирования объекта «поточечно». «точечное» возбуждение в сочетании с «поточечным» обнаружением. [ 9 ] Однако первая экспериментальная демонстрация 4пи-микроскопа состоялась в 1994 году. [ 10 ] Микроскопия 4Pi максимизирует количество доступных направлений фокусировки за счет использования двух противоположных объективов или микроскопии с двухфотонным возбуждением с использованием красного смещения света и многофотонного возбуждения. [ нужна ссылка ]

Интегрированная корреляционная микроскопия сочетает в себе флуоресцентный и электронный микроскоп. Это позволяет визуализировать ультраструктуру и контекстную информацию с помощью электронного микроскопа, используя данные флуоресцентного микроскопа в качестве инструмента маркировки. [ 11 ]

Первым методом, действительно достигшим субдифракционного разрешения, была STED-микроскопия , предложенная в 1994 году. Этот метод и все методы, следующие за концепцией RESOLFT, основаны на сильном нелинейном взаимодействии между светом и флуоресцирующими молекулами. Молекулы сильно перемещаются между различимыми молекулярными состояниями в каждом конкретном месте, так что, в конечном итоге, свет может излучаться только в небольшой части пространства, что приводит к увеличению разрешения.

Также в 1990-е годы был разработан еще один метод микроскопии сверхвысокого разрешения, основанный на широкопольной микроскопии. Существенно улучшенное размерное разрешение клеточных наноструктур, окрашенных флуоресцентным маркером, было достигнуто за счет развития локализационной СПДМ-микроскопии и структурированного лазерного освещения (пространственно-модулированное освещение, SMI). [ 12 ] Сочетание принципа SPDM с SMI привело к разработке микроскопа Vertico SMI . [ 13 ] [ 14 ] Обнаружение одиночной молекулы нормальных мигающих флуоресцентных красителей, таких как зеленый флуоресцентный белок (GFP), может быть достигнуто с помощью дальнейшего развития SPDM, так называемой технологии SPDMphymod, которая позволяет обнаруживать и подсчитывать два разных типа флуоресцентных молекул на молекулярном уровне (это технология называется двухцветной локализационной микроскопией или 2CLM). [ 15 ]

В качестве альтернативы, появление фотоактивируемой локализационной микроскопии могло бы достичь аналогичных результатов, полагаясь на мигание или переключение отдельных молекул, где доля флуоресцирующих молекул в каждый момент времени очень мала. Эта стохастическая реакция молекул на приложенный свет также соответствует сильно нелинейному взаимодействию, приводящему к субдифракционному разрешению.

[ редактировать ]

См. также

[ редактировать ]
  1. ^ Перейти обратно: а б с д Спринг КР, Дэвидсон М.В. «Введение в флуоресцентную микроскопию» . Никонская микроскопияУ . Проверено 28 сентября 2008 г.
  2. ^ «Флуоресцентный микроскоп» . Микроскопы помогают ученым исследовать скрытые миры . Нобелевский фонд . Проверено 28 сентября 2008 г.
  3. ^ Хуан Карлос Стокерт, Альфонсо Бласкес-Кастро (2017). Флуоресцентная микроскопия в науках о жизни . Издательство Bentham Science. ISBN  978-1-68108-519-7 . Архивировано из оригинала 14 мая 2019 года . Проверено 17 декабря 2017 г.
  4. ^ Хуан Б. (март 2010 г.). «Флуоресцентная микроскопия сверхразрешения» . Ежегодный обзор биохимии . 78 : 993–1016. doi : 10.1146/annurev.biochem.77.061906.092014 . ПМЦ   2835776 . ПМИД   19489737 .
  5. ^ ФАВ Куманс; Э. ван дер Пол; LWMM Терстаппен (2012). «Профиль освещения с плоской вершиной в эпифлуоресцентном микроскопе с помощью двойной матрицы микролинз» . Цитометрия Часть А. 81 (4): 324–331. дои : 10.1002/cyto.a.22029 . ПМИД   22392641 . S2CID   13812696 .
  6. ^ Колин С., Коэльо Л.П., Сунагава С., Боулер К., Карсенти Э., Борк П., Пепперкок Р. и Де Варгас К. (2017) «Количественная 3D-визуализация клеток биология и экология экологических микробных эукариот». eLife , 6 : e26066. два : 10.7554/eLife.26066.002 . Материал был скопирован из этого источника, который доступен по международной лицензии Creative Commons Attribution 4.0 .
  7. ^ Биденди, Эй Джей; Чебли, Ю; Гейтманн, А. (май 2020 г.). «Флуоресцентная визуализация целлюлозы и пектина в первичной клеточной стенке растений». Журнал микроскопии . 278 (3): 164–181. дои : 10.1111/jmi.12895 . ПМИД   32270489 . S2CID   215619998 .
  8. ^ Кандель Михаил Евгеньевич; Он, Ючен Р.; Ли, Ён Джэ; Чен, Тейлор Сюань-Ю; Салливан, Кэтрин Мишель; Айдын, Онур; Саиф, М. Тахер А.; Конг, Хёнджун; Собх, Нахиль; Попеску, Габриэль (2020). «Фазовая визуализация с вычислительной специфичностью (PICS) для измерения изменений сухой массы в субклеточных компартментах» . Природные коммуникации . 11 (1): 6256. arXiv : 2002.08361 . Бибкод : 2020NatCo..11.6256K . дои : 10.1038/s41467-020-20062-x . ПМЦ   7721808 . ПМИД   33288761 . S2CID   212725023 .
  9. ^ Кремер, К; Кремер, Т. (1978). «Соображения относительно лазерного сканирующего микроскопа с высоким разрешением и глубиной резкости» (PDF) . Микроскопика Акта . 81 (1): 31–44. ПМИД   713859 . Архивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 года . Проверено 12 августа 2013 г.
  10. ^ С.В. Хелл, ЭХК Стельцер, С. Линдек, К. Кремер; Штельцер; Линдек; Кремер (1994). «Конфокальная микроскопия с увеличенной апертурой обнаружения: конфокальная микроскопия типа B 4Pi». Оптические письма . 19 (3): 222–224. Бибкод : 1994OptL...19..222H . CiteSeerX   10.1.1.501.598 . дои : 10.1364/OL.19.000222 . ПМИД   19829598 . {{cite journal}}: CS1 maint: несколько имен: список авторов ( ссылка )
  11. ^ Барле, Кейтлин ван. «Корреляционная микроскопия: открывая мир информации с помощью флуоресценции» . Проверено 16 февраля 2017 г.
  12. ^ Хаусманн, Майкл; Шнайдер, Бернхард; Брэдл, Иоахим; Кремер, Кристоф Г. (1997), «Высокоточная дистанционная микроскопия трехмерных наноструктур с помощью флуоресцентного микроскопа с пространственно-модулированным возбуждением» (PDF) , в Биджио, Ирвинг Дж.; Шнекенбургер, Герберт; Славик, Ян; и др. (ред.), Оптическая биопсия и микроскопические методы II , том. 3197, с. 217, doi : 10.1117/12.297969 , S2CID   49339042 , заархивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 г. , получено 12 августа 2013 г.
  13. ^ Рейманн, Дж; Бэддели, Д; Гункель, М; Леммер, П; Штадтер, В; Джегу, Т; Риппе, К; Кремер, К; Бирк, Ю (2008). «Высокоточный структурный анализ субъядерных комплексов в фиксированных и живых клетках с помощью микроскопии с пространственно-модулированным освещением (SMI)» (PDF) . Хромосомные исследования . 16 (3): 367–82. дои : 10.1007/s10577-008-1238-2 . ПМИД   18461478 . S2CID   22811346 . Архивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 года . Проверено 12 августа 2013 г.
  14. ^ Бэддели, Д; Батрам, К; Вейланд, Ю; Кремер, К; Бирк, UJ (2003). «Анализ наноструктур с использованием микроскопии с пространственно-модулированным освещением» (PDF) . Протоколы природы . 2 (10): 2640–6. дои : 10.1038/nprot.2007.399 . ПМИД   17948007 . S2CID   22042676 . [ мертвая ссылка ]
  15. ^ Гункель, М; Эрдель, Ф; Риппе, К; Леммер, П; Кауфманн, Р; Хёрманн, К; Амбергер, Р; Кремер, К. (2009). «Двухцветная локализационная микроскопия клеточных наноструктур» (PDF) . Биотехнологический журнал . 4 (6): 927–38. дои : 10.1002/biot.200900005 . ПМИД   19548231 . S2CID   18162278 . Архивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 года . Проверено 12 августа 2013 г.
[ редактировать ]
Arc.Ask3.Ru: конец переведенного документа.
Arc.Ask3.Ru
Номер скриншота №: 12bf904bc59c10ff1f98f8a26ea8f339__1723187820
URL1:https://arc.ask3.ru/arc/aa/12/39/12bf904bc59c10ff1f98f8a26ea8f339.html
Заголовок, (Title) документа по адресу, URL1:
Fluorescence microscope - Wikipedia
Данный printscreen веб страницы (снимок веб страницы, скриншот веб страницы), визуально-программная копия документа расположенного по адресу URL1 и сохраненная в файл, имеет: квалифицированную, усовершенствованную (подтверждены: метки времени, валидность сертификата), открепленную ЭЦП (приложена к данному файлу), что может быть использовано для подтверждения содержания и факта существования документа в этот момент времени. Права на данный скриншот принадлежат администрации Ask3.ru, использование в качестве доказательства только с письменного разрешения правообладателя скриншота. Администрация Ask3.ru не несет ответственности за информацию размещенную на данном скриншоте. Права на прочие зарегистрированные элементы любого права, изображенные на снимках принадлежат их владельцам. Качество перевода предоставляется как есть. Любые претензии, иски не могут быть предъявлены. Если вы не согласны с любым пунктом перечисленным выше, вы не можете использовать данный сайт и информация размещенную на нем (сайте/странице), немедленно покиньте данный сайт. В случае нарушения любого пункта перечисленного выше, штраф 55! (Пятьдесят пять факториал, Денежную единицу (имеющую самостоятельную стоимость) можете выбрать самостоятельно, выплаичвается товарами в течение 7 дней с момента нарушения.)