Jump to content

Флуоресцентный микроскоп

(Перенаправлено из флуоресцентного микроскопа )

Право флуоресцентного микроскопа (Olympus BX61) с кубической башней флуоресцентного фильтра над объективными линзами в сочетании с цифровой камерой.
Duration: 2 minutes and 42 seconds.Subtitles available.
Флуоресценция и конфокальные микроскопы эксплуатации

Флуоресцентный микроскоп - это оптический микроскоп , который использует флуоресценцию вместо или в дополнение к рассеянию , отражению и ослаблению или поглощению , для изучения свойств органических или неорганических веществ. [ 1 ] [ 2 ] «Флуоресцентный микроскоп» относится к любому микроскопу, который использует флуоресценцию для генерации изображения, будь то простая настройка, например, эпифлуоресцентный микроскоп или более сложный конструкция, такой как конфокальный микроскоп , который использует оптическое разрешение для получения лучшего разрешения изображения флуоресценции Полем [ 3 ]

Образец освещается светом определенной длины волны (или длины волн), который поглощается флуорофорами , заставляя их излучать свет более длинных длин волн (то есть от другого цвета, чем поглощенный свет). Свет освещения отделяется от гораздо более слабой излучаемой флуоресценции за счет использования спектрального эмиссионного фильтра. Типичными компонентами флуоресцентного микроскопа являются источник света ( ксеноновая дуговая лампа или лампа ртути распространены; более продвинутые формы являются мощными светодиодами и лазерами ), фильтр возбуждения , дихроичное зеркало ( дихроичный или луче Фильтр (см. Рисунок ниже). Фильтры и дихроичный пучков выбираются для соответствия спектральным характеристикам возбуждения и излучения флуорофора, используемого для маркировки образца. [ 1 ] Таким образом, распределение одного флуорофора (цвет) отображается одновременно. Многоцветные изображения нескольких типов флуорофоров должны быть составлены путем объединения нескольких одноцветных изображений. [ 1 ]

Большинство используемых флуоресцентных микроскопов представляют собой эпифлуоресцентные микроскопы, где возбуждение флуорофора и обнаружение флуоресценции осуществляются с помощью одного и того же светового пути (т.е. через цель). Эти микроскопы широко используются в биологии и являются основой для более продвинутых конструкций микроскопа, таких как конфокальный микроскоп и общий флуоресцентный микроскоп внутреннего отражения (TIRF).

Эпифлуоресцентная микроскопия

[ редактировать ]
Схема флуоресцентного микроскопа.

Большинство флуоресцентных микроскопов, особенно тех, которые используются в науках о жизни , имеют эпифлуоресцентную конструкцию, показанную на диаграмме. Свет длины волны возбуждения освещает образец через объективную линзу. Флуоресценция , излучаемая образцом, сосредоточена на детекторе с помощью той же цели, которая используется для возбуждения, которое для большего разрешения потребует объектива объектива с более высокой численной апертурой . Поскольку большая часть света возбуждения передается через образцы, только отраженный возбуждающий свет достигает цели вместе с испускаемым светом, а метод эпифлуоресценции, следовательно, дает высокое отношение сигнал / шум. Дихроичный лучевой ссаживание действует как специфический фильтр длины волны, передающий флуоресцентный свет через окулярный или детектор, но отражает любой оставшийся свет возбуждения обратно в сторону источника. [ Цитация необходима ]

Источники света

[ редактировать ]

Флуоресцентная микроскопия требует интенсивного, почти монохроматического освещения, которое не могут обеспечить некоторые широко распространенные источники света, такие как галогенные лампы . [ 4 ] Используются четыре основных типа источника света, в том числе ксеноновые дуговые лампы или лампы ртути с фильтром возбуждения , лазеры , источники суперконтуальных источников и мощные светодиоды . Лазеры наиболее широко используются для более сложных методов флуоресцентной микроскопии, таких как конфокальная микроскопия и общая флуоресцентная микроскопия внутреннего отражения, в то время как ксеноновые лампы и ртутные лампы, а также светодиоды с дихроичным фильтром возбуждения обычно используются для эпифлуоресцентных микроскопов. Поместив два массива микролинза в путь освещения широкоподобного эпифлуоресцентного микроскопа, [ 5 ] высоконимерного освещения с коэффициентом вариации Можно достичь 1-2%.

Приготовление образца

[ редактировать ]
Duration: 20 seconds.
3D-анимация диатомовой коретрон SP.
Отображает наложения из четырех флуоресцентных каналов
(A) Зеленый: [Dioc6 (3) флуоресценция] - пятна клеточные мембраны, указывающие на тела ядра ячейки
(B) Cyan: [PLL -A546 флуоресценция] - общая контратака для визуализации поверхностей эукариотических клеток
(c) Синий: [Hoechst Fluorescencess] - ДНК пятна, идентифицирует ядра
(D) Красный: [АВТОФЛУАРЕССОВАНИЕ ХОЛОФИЛЛЯ [ 6 ]
Анимация начинается с наложения всех доступных флуоресцентных каналов, а затем проясняет визуализацию, включив и выключив каналы.
Образец сельди сперматозоидов , окрашенной сир -зеленым в кювете, освещенном синим светом в эпифлуоресцентном микроскопе. Зеленый Sybr в образце связывается с ДНК спермы сельди и, когда -то связан, флуоресцирование испускает зеленый свет при освещении синим светом.

Чтобы образец был подходящим для флуоресцентной микроскопии, он должен быть флуоресцентным. Есть несколько методов создания флуоресцентного образца; Основными методами являются маркировка флуоресцентными пятнами или, в случае биологических образцов, экспрессией флуоресцентного белка . внутреннюю флуоресценцию образца (т. Е. Автофлуоресценция ). В качестве альтернативы можно использовать [ 1 ] В научных науках флуоресцентная микроскопия является мощным инструментом, который позволяет специфическому и чувствительному окрашиванию образца, чтобы обнаружить распределение белков или других интересующих молекул. В результате существует множество методов флуоресцентного окрашивания биологических образцов. [ Цитация необходима ]

Биологические флуоресцентные пятна

[ редактировать ]

Многие флуоресцентные пятна были разработаны для ряда биологических молекул. Некоторые из них представляют собой небольшие молекулы, которые по своей природе являются флуоресцентными и связывают биологическую молекулу, представляющую интерес. Основными примерами этого являются пятна нуклеиновых кислот , такие как DAPI и Hoechst (возбужденный светом ультрафиолетовой длины), а также DRAQ5 и DRAQ7 (оптимально возбуждая красным светом), которые все связывают незначительную канавку ДНК , таким образом, маркируя ядра клеток. Другие - это лекарства, токсины или пептиды, которые связывают специфические клеточные структуры и были дериватизированы флуоресцентным репортером. Основным примером этого класса флуоресцентного окрашивания является фаллоидин , который используется для окрашивания актиновых волокон в млекопитающих клетках . Новый пептид, известный как гибридизирующий пептид коллагена , также может быть конъюгирован с флуорофорами и используется для окрашивания денатурированных коллагеновых волокон. Окрашивание растений клеточных стен выполняется с использованием пятен или красителей, которые связывают целлюлозу или пектин . Поиск флуоресцентных зондов с высокой специфичностью, которая также позволяет живой визуализации растительных клеток. [ 7 ]

Существует много флуоресцентных молекул, называемых флуорофорами или флуорохромами, такими как флуоресцеин , Alexa Fluors или Dylight 488 , которые могут быть химически связаны с другой молекулой, которая связывает интересующую мишень в образце.

Иммунофлуоресценция

[ редактировать ]

Иммунофлуоресценция - это метод, который использует очень специфическое связывание антитела со своим антигеном для маркировки специфических белков или других молекул в клетке. Образец обрабатывается первичным антителом, специфичным для интересующей молекулы. Флуорофор может быть непосредственно конъюгирован с первичным антителом. В качестве альтернативы можно использовать вторичное антитело , конъюгированное с флуорофором, которое специально связывается с первым антителом. Например, первичное антитело, поднятое у мыши, которое распознает тубулин в сочетании с вторичным антиммуным антителом, дериватизированным флуорофором, можно использовать для маркировки микротрубочек в клетке. [ Цитация необходима ]

Флуоресцентные белки

[ редактировать ]

Современное понимание генетики и методов, доступных для модификации ДНК, позволяет ученым генетически модифицировать белки, чтобы также носить репортер флуоресцентного белка. В биологических образцах это позволяет ученому напрямую делать интересный белок флуоресцентно. Местоположение белка может затем быть непосредственно отслежено, в том числе в живых клетках.

Ограничения

[ редактировать ]

Флуорофоры теряют свою способность к флуоресции, поскольку они освещены в процессе, называемом фотообесцвечиванием . Флуоресцентное молекулы происходит, когда флуоресцентные молекулы накапливают химические повреждения от электронов, возбужденных во время флуоресценции. Фотобличков может серьезно ограничить время, в течение которого образец может наблюдаться с помощью флуоресцентной микроскопии. Существует несколько методов, чтобы уменьшить фотообесцентрирование, такие как использование более надежных флуорофоров, путем минимизации освещения или с использованием фотозащитных химикатов мусорщика . [ Цитация необходима ]

Флуоресцентная микроскопия с флуоресцентными репортерными белками позволила анализировать живые клетки с помощью флуоресцентной микроскопии, однако клетки подвержены фототоксичности, особенно при короткой длине волны. Кроме того, флуоресцентные молекулы имеют тенденцию генерировать реактивные химические виды при освещении, что усиливает фототоксичный эффект. [ Цитация необходима ]

В отличие от передачи и отраженных методов световой микроскопии, флуоресцентная микроскопия позволяет только наблюдать специфические структуры, которые были помечены для флуоресценции. Например, наблюдение за образцом ткани, приготовленного с флуоресцентным окрашиванием ДНК с помощью флуоресцентной микроскопии только выявляет организацию ДНК в клетках и не выявляет ничего и другого о морфологии клеток.

Вычислительные методы, которые предлагают оценить флуоресцентный сигнал из нефлюоресцентных изображений (таких как Brightfield), могут уменьшить эти проблемы. [ 8 ] В целом, эти подходы включают в себя обучение глубокой сверточной нейронной сети на окрашенных клетках, а затем оценивают флуоресценцию на неокрашенных образцах. Таким образом, путем отделения исследуемых ячеек из ячеек, используемых для обучения сети, визуализация может работать быстрее и с пониженной фототоксичностью.

Методы подразделения

[ редактировать ]

Волновая природа света ограничивает размер пятна, на которое можно сфокусировать свет из -за предела дифракции . Это ограничение было описано в 19 веке Эрнстом Аббе и «ограничивает разрешение оптического микроскопа примерно до половины длины волны используемого света». Флуоресцентная микроскопия является центральной для многих методов, которые направлены на достижение этого предела с помощью специализированных оптических конфигураций. [ Цитация необходима ]

Несколько улучшений в методах микроскопии были изобретены в 20 -м веке и привели к увеличению разрешения и в некоторой степени контрастировать. Однако они не преодолели предел дифракции. В 1978 году были разработаны первые теоретические идеи, чтобы преодолеть этот барьер, используя микроскоп 4PI в качестве конфокального лазерного сканирующего флуоресцентного микроскопа, где свет идеально сфокусирован от всех сторон до общего фокуса, который используется для сканирования объекта по точечным пустям. Точка «возбуждение в сочетании с обнаружением« точка на точке ». [ 9 ] Однако первая экспериментальная демонстрация микроскопа 4PI состоялась в 1994 году. [ 10 ] 4PI-микроскопия максимизирует количество доступных направлений фокусировки, используя две противоположные объективы или двухфотонную возбуждающую микроскопию с использованием красного смещения света и мультифотонного возбуждения. [ Цитация необходима ]

Интегрированная коррелятивная микроскопия объединяет флуоресцентный микроскоп с электронным микроскопом. Это позволяет визуализировать ультраструктуру и контекстную информацию с помощью электронного микроскопа при использовании данных из флуоресцентного микроскопа в качестве инструмента маркировки. [ 11 ]

Первым методом, направленным на то, чтобы действительно достичь разрешения субмадромного диапазона была микроскопия STED , предложенная в 1994 году. Этот метод и все методы после концепции разрешения зависят от сильного нелинейного взаимодействия между светом и флуоресцирующими молекулами. Молекулы сильно проводятся между различимыми молекулярными состояниями в каждом конкретном месте, так что, наконец, свет может быть излучен только на небольшой доли пространства, следовательно, повышенное разрешение.

Также в 1990 -х годах был разработан еще один метод микроскопии суперрезоляции, основанный на широкой полевой микроскопии. Значительно улучшенное разрешение размера клеточных наноструктур, окрашенных флуоресцентным маркером, было достигнуто путем развития микроскопии локализации SPDM и структурированного лазерного освещения (пространственно модулированное освещение, SMI). [ 12 ] Сочетание принципа SPDM с SMI привело к развитию микроскопа Vertico SMI . [ 13 ] [ 14 ] Одномолекула обнаружение нормальных мигающих флуоресцентных красителей, таких как зеленый флуоресцентный белок (GFP), может быть достигнуто с использованием дальнейшего развития SPDM так называемой технологии SPDMphymod, которая позволяет обнаружить и считать два различных типа флуоресцентных молекул на молекулярном уровне (это Технология называется двухцветной микроскопией локализации или 2CLM). [ 15 ]

Альтернативно, появление фотоактивированной локализационной микроскопии может достичь аналогичных результатов, полагаясь на мигание или переключение отдельных молекул, где доля флуоресцирующих молекул в каждый раз очень мала. Этот стохастический отклик молекул на приложенном свете также соответствует сильно нелинейному взаимодействию, что приводит к разрешению подразделения.

[ редактировать ]

Смотрите также

[ редактировать ]
  1. ^ Jump up to: а беременный в дюймовый Весна К.Р., Дэвидсон М.В. «Введение в флуоресцентную микроскопию» . Nikon Microscopyu . Получено 28 сентября 2008 года .
  2. ^ «Флуоресцентный микроскоп» . Микроскопы - ученые исследуют скрытые миры . Нобелевский фонд . Получено 28 сентября 2008 года .
  3. ^ Хуан Карлос Стокерт, Альфонсо Бласкес-Кастро (2017). Флуоресцентная микроскопия в науках о жизни . Bentham Science Publishers. ISBN  978-1-68108-519-7 Полем Архивировано из оригинала 14 мая 2019 года . Получено 17 декабря 2017 года .
  4. ^ Huang B (март 2010 г.). «Флуоресцентная микроскопия супер разрешения» . Ежегодный обзор биохимии . 78 : 993–1016. doi : 10.1146/annurev.biochem.77.061906.092014 . PMC   2835776 . PMID   19489737 .
  5. ^ Faw Coumans; Э. ван дер Пол; LWMM Terstappen (2012). «Профиль освещения плоской вершины в эпизо-флуоресцентном микроскопе с помощью двух микрообруметочных массивов» . Цитометрия часть а . 81 (4): 324–331. doi : 10.1002/cyto.a.22029 . PMID   22392641 . S2CID   13812696 .
  6. ^ Colin, S., Coelho, LP, Sunagawa, S., Bowler, C., Karsenti, E., Bork, P., Pepperkok, R. and de Vargas, C. (2017) "Количественное 3D-изображение для клетки Биология и экология экологических микробных эукариот ». Elife , 6 : E26066. два : 10.7554/elife.26066.002 . Материал был скопирован из этого источника, который доступен по международной лицензии Creative Commons Attribution 4.0 .
  7. ^ Bidhendi, AJ; Chebli, y; Geitmann, A (май 2020). «Визуализация флуоресценции целлюлозы и пектина в первичной клеточной стенке растений». Журнал микроскопии . 278 (3): 164–181. doi : 10.1111/jmi.12895 . PMID   32270489 . S2CID   215619998 .
  8. ^ Кандель, Михаил Э.; Он, Ючен Р.; Ли, Янг Чжэ; Чен, Тейлор Хсуань-Ю; Салливан, Кэтрин Мишель; Айдин, Онур; Саиф, М. Тахер А.; Конг, Хёнджун; Собх, Нахил; Попеску, Габриэль (2020). «Фазовая визуализация с вычислительной специфичностью (PICS) для измерения изменений сухой массы в субклеточных компартментах» . Природная связь . 11 (1): 6256. Arxiv : 2002.08361 . Bibcode : 2020natco..11.6256k . doi : 10.1038/s41467-020-20062-x . PMC   7721808 . PMID   33288761 . S2CID   212725023 .
  9. ^ Cremer, c; Cremer, T (1978). «Соображения по лазерному сканированию-микроскопе с высоким разрешением и глубиной поля» (PDF) . Microscopica Acta . 81 (1): 31–44. PMID   713859 . Архивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 года . Получено 12 августа 2013 года .
  10. ^ SW Hell, EHK Stelzer, S. Lindek, C. Cremer; Стелцер; Линдек; Кремер (1994). «Конфокальная микроскопия с повышенной апертурой обнаружения: конфокальная микроскопия типа B 4PI». Оптические письма . 19 (3): 222–224. Bibcode : 1994optl ... 19..222h . Citeseerx   10.1.1.501.598 . doi : 10.1364/ol.19.000222 . PMID   19829598 . {{cite journal}}: Cs1 maint: несколько имен: список авторов ( ссылка )
  11. ^ Баарле, Кейтлин Ван. «Корреляционная микроскопия: открытие миров информации с флуоресценцией» . Получено 16 февраля 2017 года .
  12. ^ Хаусманн, Майкл; Шнайдер, Бернхард; Брэдл, Йоахим; Cremer, Christoph G. (1997), «Высокая дистанционная микроскопия трехмерных наноструктур с помощью пространственно модулируемого возбуждения флуоресцентного микроскопа» (PDF) , в Bigio, Irving J; Schneckenburger, Герберт; Славик, Ян; и др. (ред.), Оптические биопсии и микроскопические методы II , Vol. 3197, с. 217, doi : 10.1117/12.297969 , S2CID   49339042 , архивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 года , полученная 12 августа 2013 г.
  13. ^ Рейманн, J; Baddeley, D; Гункель, м; Леммер, P; Stadter, w; Джегу, т; Rippe, K; Cremer, c; Birk, U (2008). «Высокий структурный анализ субнуклеарных комплексов в фиксированных и живых клетках посредством пространственно модулированной микроскопии освещения (SMI)» (PDF) . Исследование хромосом . 16 (3): 367–82. doi : 10.1007/s10577-008-1238-2 . PMID   18461478 . S2CID   22811346 . Архивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 года . Получено 12 августа 2013 года .
  14. ^ Baddeley, D; Batram, C; Вейланд, y; Cremer, c; Бирк, UJ (2003). «Анализ наноструктуры с использованием пространственно модулированной микроскопии освещения» (PDF) . Природные протоколы . 2 (10): 2640–6. doi : 10.1038/nprot.2007.399 . PMID   17948007 . S2CID   22042676 . [ мертвая ссылка ]
  15. ^ Гункель, м; Эрдель, F; Rippe, K; Леммер, P; Кауфманн, R; Hörmann, C; Amberger, R; Cremer, C (2009). «Двухцветная локализационная микроскопия клеточных наноструктур» (PDF) . Биотехнологический журнал . 4 (6): 927–38. doi : 10.1002/biot.200900005 . PMID   19548231 . S2CID   18162278 . Архивировано из оригинала (PDF) 4 марта 2016 года . Получено 12 августа 2013 года .
[ редактировать ]
Arc.Ask3.Ru: конец переведенного документа.
Arc.Ask3.Ru
Номер скриншота №: 166384b664122844375f61fc733c998d__1723187820
URL1:https://arc.ask3.ru/arc/aa/16/8d/166384b664122844375f61fc733c998d.html
Заголовок, (Title) документа по адресу, URL1:
Fluorescence microscope - Wikipedia
Данный printscreen веб страницы (снимок веб страницы, скриншот веб страницы), визуально-программная копия документа расположенного по адресу URL1 и сохраненная в файл, имеет: квалифицированную, усовершенствованную (подтверждены: метки времени, валидность сертификата), открепленную ЭЦП (приложена к данному файлу), что может быть использовано для подтверждения содержания и факта существования документа в этот момент времени. Права на данный скриншот принадлежат администрации Ask3.ru, использование в качестве доказательства только с письменного разрешения правообладателя скриншота. Администрация Ask3.ru не несет ответственности за информацию размещенную на данном скриншоте. Права на прочие зарегистрированные элементы любого права, изображенные на снимках принадлежат их владельцам. Качество перевода предоставляется как есть. Любые претензии, иски не могут быть предъявлены. Если вы не согласны с любым пунктом перечисленным выше, вы не можете использовать данный сайт и информация размещенную на нем (сайте/странице), немедленно покиньте данный сайт. В случае нарушения любого пункта перечисленного выше, штраф 55! (Пятьдесят пять факториал, Денежную единицу (имеющую самостоятельную стоимость) можете выбрать самостоятельно, выплаичвается товарами в течение 7 дней с момента нарушения.)