Jump to content

Нозерн-блот

(Перенаправлено из Нозерн-блоттинга )
Блок-схема, описывающая общую процедуру обнаружения РНК методом нозерн-блоттинга.

Нозерн -блоттинг , или РНК-блоттинг. [1] — это метод, используемый в в области молекулярной биологии исследованиях для изучения экспрессии генов путем обнаружения РНК (или изолированной мРНК ) в образце. [2] [3]

С помощью нозерн-блоттинга можно наблюдать клеточный контроль над структурой и функцией путем определения конкретной скорости экспрессии генов во время дифференцировки и морфогенеза , а также в аномальных или болезненных состояниях. [4] Нозерн-блоттинг включает использование электрофореза для разделения образцов РНК по размеру и обнаружение с помощью гибридизационного зонда, комплементарного части или всей целевой последовательности. Строго говоря, термин «нозерн-блоттинг» относится конкретно к капиллярному переносу РНК из геля для электрофореза на мембрану для блоттинга. Однако весь процесс обычно называют нозерн-блоттингом. [5] Техника нозерн-блоттинга была разработана в 1977 году Джеймсом Алвайном, Дэвидом Кемпом и Джорджем Старком в Стэнфордском университете . [6] Нозерн-блоттинг получил свое название от сходства с первым методом блоттинга, Саузерн-блоттингом , названным в честь биолога Эдвина Сазерна . [2] Основное отличие состоит в том, что РНК, а не ДНК . при нозерн-блоттинге анализируется [7]

Процедура

[ редактировать ]

Общая процедура блоттинга [5] начинается с экстракции тотальной РНК из гомогенизированного образца ткани или из клеток. Затем мРНК эукариот можно выделить с помощью хроматографии на олиго (dT) целлюлозе , чтобы выделить только те РНК, которые имеют поли(А)-хвост . [8] [9] Затем образцы РНК разделяют с помощью гель-электрофореза. Поскольку гели хрупкие и зонды не могут проникнуть в матрицу, образцы РНК, теперь разделенные по размеру, переносятся на нейлоновую мембрану через капиллярную или вакуумную систему блоттинга.

Установка системы капиллярного блоттинга для переноса РНК из геля для электрофореза на мембрану для блоттинга.

Нейлоновая мембрана с положительным зарядом наиболее эффективна для использования в нозерн-блоттинге, поскольку отрицательно заряженные нуклеиновые кислоты обладают высоким сродством к ним. Буфер для переноса, используемый для блоттинга, обычно содержит формамид , поскольку он снижает температуру отжига взаимодействия зонд-РНК, тем самым устраняя необходимость в высоких температурах, которые могут вызвать деградацию РНК. [10] Как только РНК переносится на мембрану, она иммобилизуется посредством ковалентной связи с мембраной под действием УФ-света или тепла. После того как зонд помечен, он гибридизуется с РНК на мембране. Экспериментальные условия, которые могут повлиять на эффективность и специфичность гибридизации, включают ионную силу, вязкость, длину дуплекса, несовпадающие пары оснований и состав оснований. [11] Мембрану промывают, чтобы гарантировать специфическое связывание зонда и предотвратить возникновение фоновых сигналов. Гибридные сигналы затем обнаруживаются с помощью рентгеновской пленки и могут быть определены количественно с помощью денситометрии . Чтобы создать контрольные образцы для сравнения в нозерн-блоттинге, можно использовать образцы, не показывающие интересующий генный продукт, после определения с помощью микрочипов или RT-PCR . [11]

РНК обрабатывают формальдегид-агарозным гелем, чтобы выделить субъединицы рибосомы 28S (верхняя полоса) и 18S (нижняя полоса).

Образцы РНК чаще всего разделяют на агарозных гелях, содержащих формальдегид в качестве денатурирующего агента, ограничивающего вторичную структуру РНК. [11] [12] Гели можно окрасить бромидом этидия (EtBr) и просмотреть в УФ-свете, чтобы оценить качество и количество РНК перед блоттингом. [11] в полиакриламидном Электрофорез геле с мочевиной также можно использовать для разделения РНК, но чаще всего его используют для фрагментированных РНК или микроРНК. [13] Рядом с образцами на геле для электрофореза часто проводят лестницу РНК, чтобы наблюдать за размером полученных фрагментов, но в образцах тотальной РНК субъединицы рибосом могут действовать как маркеры размера. [11] Поскольку большая субъединица рибосомы имеет размер 28S (приблизительно 5 т.п.н.), а малая субъединица рибосомы - 18S (приблизительно 2 т.п.н.), на геле появляются две заметные полосы, причем интенсивность большей почти в два раза превышает интенсивность меньшей. [11] [14]

Зонды для нозерн-блоттинга состоят из нуклеиновых кислот с последовательностью, комплементарной всей или части интересующей РНК. Это могут быть ДНК, РНК или олигонуклеотиды, содержащие минимум 25 оснований, комплементарных целевой последовательности. [5] Зонды РНК (рибозонды), которые транскрибируются in vitro, способны выдерживать более строгие этапы промывки, предотвращая часть фонового шума. [11] Обычно кДНК создается с помощью меченых праймеров для интересующей последовательности РНК, которые действуют как зонд в нозерн-блоттинге. [15] Зонды должны быть помечены либо радиоактивными изотопами ( 32 P) или с хемилюминесценцией , при которой щелочная фосфатаза или пероксидаза хрена (HRP) расщепляют хемилюминесцентные субстраты, вызывая заметное излучение света. [16] Хемилюминесцентное мечение может происходить двумя способами: либо зонд присоединяется к ферменту, либо зонд метится лигандом (например, биотином ), при котором лиганд (например, авидин или стрептавидин ) присоединяется к ферменту (например, HRP). . [11] Рентгеновская пленка может обнаруживать как радиоактивные, так и хемилюминесцентные сигналы, и многие исследователи предпочитают хемилюминесцентные сигналы, потому что они быстрее, более чувствительны и уменьшают опасность для здоровья, связанную с радиоактивными метками. [16] Одну и ту же мембрану можно зондировать до пяти раз без значительной потери целевой РНК. [10]

Приложения

[ редактировать ]

Нозерн-блоттинг позволяет наблюдать характер экспрессии определенного гена в тканях, органах, стадиях развития, уровнях экологического стресса, инфекции патогенов и в течение курса лечения. [9] [15] [17] Этот метод использовался, чтобы показать сверхэкспрессию онкогенов и подавление генов-супрессоров опухолей в раковых клетках по сравнению с «нормальными» тканями. [11] а также экспрессия генов при отторжении трансплантированных органов. [18] Если при нозерн-блоттинге обнаруживается повышенная экспрессия гена по обилию мРНК, образец можно затем секвенировать, чтобы определить, известен ли этот ген исследователям или это новое открытие. [18] Паттерны экспрессии, полученные в данных условиях, могут дать представление о функции этого гена. Поскольку РНК сначала разделяется по размеру, если используется только один тип зонда, дисперсия уровня каждой полосы на мембране может дать представление о размере продукта, предполагая альтернативные продукты сплайсинга одного и того же гена или мотивы повторяющейся последовательности. [8] [14] Различия в размере генного продукта также могут указывать на делеции или ошибки в обработке транскриптов. Изменяя зонд-мишень, используемый в известной последовательности, можно определить, какой участок РНК отсутствует. [2]

Преимущества и недостатки

[ редактировать ]

Анализ экспрессии генов можно проводить несколькими различными методами, включая RT-PCR, анализы защиты от РНКазы, микрочипы, RNA-Seq , серийный анализ экспрессии генов (SAGE), а также нозерн-блоттинг. [4] [5] Микрочипы используются довольно часто и обычно согласуются с данными, полученными с помощью нозерн-блоттинга; однако иногда нозерн-блоттинг способен обнаружить небольшие изменения в экспрессии генов, чего не могут сделать микрочипы. [19] Преимущество микрочипов перед нозерн-блоттингом заключается в том, что одновременно можно визуализировать тысячи генов, тогда как нозерн-блоттинг обычно рассматривает один или небольшое количество генов. [17] [19]

Проблемой нозерн-блоттинга часто является разложение образца РНКазами (как эндогенными по отношению к образцу, так и загрязнением окружающей среды), чего можно избежать путем надлежащей стерилизации стеклянной посуды и использования ингибиторов РНКазы, таких как DEPC ( диэтилпирокарбонат ). [5] Химические вещества, используемые в большинстве нозерн-блоттингов, могут представлять опасность для исследователя, поскольку формальдегид, радиоактивные материалы, бромид этидия, DEPC и ультрафиолетовый свет при определенных воздействиях вредны. [11] По сравнению с RT-PCR нозерн-блоттинг обладает низкой чувствительностью, но также обладает высокой специфичностью, что важно для снижения ложноположительных результатов. [11]

Преимущества использования нозерн-блоттинга включают определение размера РНК, наблюдение альтернативных продуктов сплайсинга, использование зондов с частичной гомологией, качество и количество РНК можно измерить на геле перед блоттингом, а мембраны можно хранить. и подвергался критике в течение многих лет после блоттинга. [11]

Для нозерн-блоттинга для обнаружения ацетилхолинэстеразы мРНК нерадиоактивный метод сравнивали с радиоактивным методом и обнаружили, что он столь же чувствителен, как и радиоактивный, но не требует защиты от радиации и требует меньше времени. [20]

Обратный нозерн-блот

[ редактировать ]

Исследователи иногда используют вариант процедуры, известный как обратный нозерн-блоттинг. В этой процедуре нуклеиновая кислота-субстрат (прикрепленная к мембране) представляет собой набор изолированных фрагментов ДНК, а зонд представляет собой РНК, экстрагированную из ткани и радиоактивно помеченную.Использование ДНК-микрочипов , получивших широкое распространение в конце 1990-х — начале 2000-х годов, больше похоже на обратную процедуру, поскольку предполагает использование изолированных фрагментов ДНК, прикрепленных к субстрату, и гибридизацию с зондом, изготовленным из клеточной РНК. . Таким образом, обратная процедура, хотя изначально и была необычной, позволила северному анализу развиться в профилирование экспрессии генов , при котором можно контролировать экспрессию многих (возможно, всех) генов в организме.

См. также

[ редактировать ]
  1. ^ Гилберт, С.Ф. (2000) Биология развития, 6-е изд. Сандерленд, Массачусетс, Sinauer Associates.
  2. ^ Jump up to: а б с Альбертс Б., Джонсон А., Льюис Дж. Рафф М., Робертс К., Уолтер П. 2008. Молекулярная биология клетки, 5-е изд. Garland Science, Taylor & Francisco Group, Нью-Йорк, стр. 538–539.
  3. ^ Кевил, К.Г., Уолш, Л., Лару, Ф.С., Калогерис, Т., Гришам, М.Б., Александр, Дж.С. (1997) Улучшенный быстрый северный протокол. Биохим. и биофиз. Исследовательский комм. 238:277–279.
  4. ^ Jump up to: а б Шламп, К.; Вайнманн, А.; Крупп, М.; Маасс, Т.; Галле, PR; Тойфель, А. (2008). «BlotBase: база данных нозерн-блоттинга». Джин . 427 (1–2): 47–50. дои : 10.1016/j.gene.2008.08.026 . ПМИД   18838116 .
  5. ^ Jump up to: а б с д и Трейхурн, П. (1996) Нозерн-блоттинг. Про. Соц. питания. 55:583–589.
  6. ^ Алвин Джей Си, Кемп Диджей, Старк Г. Р. (1977). «Метод обнаружения специфических РНК в агарозных гелях путем переноса на диазобензилоксиметил-бумагу и гибридизации с ДНК-зондами» . Учеб. Натл. акад. наук. США . 74 (12): 5350–4. Бибкод : 1977PNAS...74.5350A . дои : 10.1073/pnas.74.12.5350 . ПМК   431715 . ПМИД   414220 .
  7. ^ Бор, ЮК; Шварц, Дж.; Ли, Ю.; Койл, Дж.; Рекош, Д.; Хаммаршельд, Мария-Луиза (2006). «Нозерн-блот-анализ мРНК полирибосом млекопитающих» . Протоколы природы . дои : 10.1038/нпрот.2006.216 .
  8. ^ Jump up to: а б Дюран, генеральный директор; Зукин, Р.С. (1993). «Регуляция развития мРНК, кодирующих каинатные / AMPA-рецепторы мозга крысы: исследование Northern Analysis». Дж. Нейрохем . 61 (6): 2239–2246. дои : 10.1111/j.1471-4159.1993.tb07465.x . ПМИД   8245974 . S2CID   33955961 .
  9. ^ Jump up to: а б Мори, Х.; Такэда-Ёсикава, Ю.; Хара-Нишимура, И.; Нисимура, М. (1991). «Клонирование малатсинтазы тыквы и секвенирование кДНК и нозерн-блот-анализ». Евро. Дж. Биохим . 197 (2): 331–336. дои : 10.1111/j.1432-1033.1991.tb15915.x . ПМИД   1709098 .
  10. ^ Jump up to: а б Ян, Х.; Маклиз, Дж.; Вайсбарт, М.; Дионн, Ж.-Л.; Лемэр, И.; Обин, Р.А. (1993). «Упрощенный протокол высокой пропускной способности для северной гибридизации» . Исследования нуклеиновых кислот . 21 (14): 3337–3338. дои : 10.1093/нар/21.14.3337 . ПМК   309787 . ПМИД   8341618 .
  11. ^ Jump up to: а б с д и ж г час я дж к л Стрейт, С.; Михальски, CW; Эркан, М.; Клиф, Дж.; Фрисс, Х. (2009). «Нозерн-блот-анализ для обнаружения РНК в клетках и тканях рака поджелудочной железы». Протоколы природы . 4 (1): 37–43. дои : 10.1038/nprot.2008.216 . ПМИД   19131955 . S2CID   24980302 .
  12. ^ Яманака, С.; Поксай, Канзас; Арнольд, Канзас; Иннерарность, TL (1997). «Новая мРНК репрессора трансляции широко редактируется в печени, содержащей опухоли, вызванные трансгенной экспрессией фермента, редактирующего мРНК апоВ» . Генс Дев . 11 (3): 321–333. дои : 10.1101/gad.11.3.321 . ПМИД   9030685 .
  13. ^ Валоци, А., Хорньик, К., Варга, Н., Бургян, Дж., Кауппинен, С., Хавелда, З. (2004) Чувствительное и специфическое обнаружение микроРНК с помощью нозерн-блот-анализа с использованием LNA-модифицированных олигонуклеотидных зондов. Нук. Исследования кислот. 32: е175.
  14. ^ Jump up to: а б Гортнер, Г.; Пфеннингер, М.; Каль, Г.; Вейзинг, К. (1996). «Нозерн-блот-анализ транскрипции простых повторяющихся последовательностей у растений». Электрофорез . 17 (7): 1183–1189. дои : 10.1002/elps.1150170702 . ПМИД   8855401 . S2CID   36857667 .
  15. ^ Jump up to: а б Лян, П. Парди, AB (1995) Последние достижения в области дифференциального отображения. Текущее мнение Иммунол. 7: 274–280.
  16. ^ Jump up to: а б Энглер-Блюм, Г.; Мейер, М.; Фрэнк, Дж.; Мюллер, Джорджия (1993). «Уменьшение фоновых проблем при нерадиоактивном нозерн- и Саузерн-блот-анализе обеспечивает более высокую чувствительность, чем гибридизации на основе 32P». Анальный. Биохим . 210 (2): 235–244. дои : 10.1006/abio.1993.1189 . ПМИД   7685563 .
  17. ^ Jump up to: а б Болдуин Д., Крейн В., Райс Д. (1999) Сравнение методов гелевого, нейлонового фильтра и микрочипов для обнаружения дифференциальной экспрессии РНК в растениях. Текущее мнение по биол. растений. 2: 96–103.
  18. ^ Jump up to: а б Утанс, У.; Лян, П.; Винер, ЛР; Карновский, МЮ; Рассел, Мэн (1994). «Хроническое сердечное отторжение: идентификация пяти генов с повышенной регуляцией в трансплантированных сердцах с помощью дифференциального отображения мРНК» . Учеб. Натл. акад. наук. США . 91 (14): 6463–6467. Бибкод : 1994PNAS...91.6463U . дои : 10.1073/pnas.91.14.6463 . ПМЦ   44222 . ПМИД   8022806 .
  19. ^ Jump up to: а б Танигучи, М.; Миура, К.; Ивао, Х.; Яманака, С. (2001). «Количественная оценка ДНК-микрочипов - сравнение с нозерн-блот-анализом». Геномика . 71 (1): 34–39. дои : 10.1006/geno.2000.6427 . ПМИД   11161795 .
  20. ^ Крефт К., Крефт С., Комель Р., Грубич З. (2000). Нерадиоактивный нозерн-блоттинг для определения мРНК ацетилхолинэстеразы. Арка Пфлюгерса – Eur J Physiol, 439:R66-R67
[ редактировать ]
Arc.Ask3.Ru: конец переведенного документа.
Arc.Ask3.Ru
Номер скриншота №: 2f18c59300832e07a556e685bc1cb877__1711165860
URL1:https://arc.ask3.ru/arc/aa/2f/77/2f18c59300832e07a556e685bc1cb877.html
Заголовок, (Title) документа по адресу, URL1:
Northern blot - Wikipedia
Данный printscreen веб страницы (снимок веб страницы, скриншот веб страницы), визуально-программная копия документа расположенного по адресу URL1 и сохраненная в файл, имеет: квалифицированную, усовершенствованную (подтверждены: метки времени, валидность сертификата), открепленную ЭЦП (приложена к данному файлу), что может быть использовано для подтверждения содержания и факта существования документа в этот момент времени. Права на данный скриншот принадлежат администрации Ask3.ru, использование в качестве доказательства только с письменного разрешения правообладателя скриншота. Администрация Ask3.ru не несет ответственности за информацию размещенную на данном скриншоте. Права на прочие зарегистрированные элементы любого права, изображенные на снимках принадлежат их владельцам. Качество перевода предоставляется как есть. Любые претензии, иски не могут быть предъявлены. Если вы не согласны с любым пунктом перечисленным выше, вы не можете использовать данный сайт и информация размещенную на нем (сайте/странице), немедленно покиньте данный сайт. В случае нарушения любого пункта перечисленного выше, штраф 55! (Пятьдесят пять факториал, Денежную единицу (имеющую самостоятельную стоимость) можете выбрать самостоятельно, выплаичвается товарами в течение 7 дней с момента нарушения.)