венепункции
В медицине венепункцией или венепункцией называют процесс получения внутривенного доступа с целью забора венозной крови (также называемой флеботомией ) или внутривенной терапии . В здравоохранении эту процедуру выполняют ученые медицинских лабораторий , практикующие врачи , некоторые врачи скорой помощи , парамедики , флеботомисты , специалисты по диализу и другой медперсонал. [1] В ветеринарии процедуру выполняют ветеринары и ветеринарные техники .
Для получения точных лабораторных результатов важно следовать стандартной процедуре взятия образцов крови. Любая ошибка при сборе крови или заполнении пробирок может привести к ошибочным лабораторным результатам. [2]
Венипункция является одной из наиболее часто выполняемых инвазивных процедур и проводится по любой из пяти причин:
- получить кровь для диагностических целей;
- контролировать уровень компонентов крови; [3]
- для проведения терапевтического лечения, включая лекарства, питание или химиотерапию;
- для удаления крови из-за избыточного уровня железа или эритроцитов ( эритроцитов ); или
- для сбора крови для последующего использования, в основном переливания донору для или другому человеку .
Анализ крови является важным диагностическим инструментом, доступным врачам в сфере здравоохранения.
Кровь чаще всего получают из поверхностных вен верхней конечности. [1] Срединная локтевая вена , которая лежит в локтевой ямке впереди локтя, расположена близко к поверхности кожи, рядом не расположено множество крупных нервов. Другие вены, которые можно использовать в локтевой ямке для венепункции, включают цефалическую , базиличную и срединную предплечевую вены . [4]
Небольшое количество крови можно взять из пальца и собрать у младенцев с помощью укола в пятку или из вен черепа с помощью крылатой иглы для инфузии .
Флеботомия (разрез вены) также является лечением некоторых заболеваний, таких как гемохроматоз , первичная и вторичная полицитемия .
Осложнения
[ редактировать ]Исследование доноров крови, проведенное в 1996 году (при сдаче крови используется игла большего размера, чем при обычной венепункции), показало, что 1 из 6300 доноров получил повреждение нерва. [5]
Риск и побочные эффекты могут включать в себя множество вещей. Головокружение, потливость, снижение частоты сердечных сокращений и артериального давления. [1] [6]
Оборудование
[ редактировать ]
Существует множество способов взятия крови из вены, и используемый метод зависит от возраста человека, имеющегося оборудования и типа требуемого анализа.
Большая часть забора крови в США, Великобритании, Канаде и Гонконге осуществляется с помощью системы вакуумных пробирок. Двумя распространенными системами являются Vacutainer (Becton, Dickinson and Company) и Vacuette (Greiner Bio-One). Оборудование состоит из пластикового адаптера, также известного как трубка или иглодержатель/концентратор, иглы для подкожных инъекций и вакуумной трубки. При определенных обстоятельствах можно использовать шприц, часто с иглой-бабочкой , которая представляет собой пластиковый катетер, прикрепленный к короткой игле. В развивающихся странах система вакуумных трубок является предпочтительным методом взятия крови. [ нужна ссылка ]
С вакуумными или вакуумными трубками
[ редактировать ]
Компания Greiner Bio-One произвела первую в мире пластиковую вакуумную пробирку для взятия крови в 1985 году под торговой маркой VACUETTE. Сегодня многие компании продают электронные лампы, поскольку патент на это устройство теперь находится в открытом доступе. Эти трубки производятся с удалением определенного объема газа из запаянной трубки. Когда игла из втулки или передающего устройства вставляется в пробку, вакуум пробирки автоматически втягивает необходимый объем крови. [ нужна ссылка ]
Базовая система вакуумных пробирок (ETS) состоит из иглы, держателя пробирок и вакуумированных пробирок. Игла прикрепляется к держателю пробирки флеботомистом перед взятием пробы или может поставляться производителем как единое целое. Игла выступает через конец держателя пробирки и имеет по игле на каждом конце. После предварительной очистки места венепункции и наложения жгута флеботомист снимает колпачок с иглы, прикрепленной к трубкодержателю, вводит иглу в вену, затем вставляет эвакуированные пробирки в пробиркодержатель, где пробка пробирки протыкается задним концом пробирки. иголка. Вакуум в трубке автоматически забирает необходимую кровь непосредственно из вены. К одной игле можно поочередно прикреплять и снимать несколько вакуумных трубок, что позволяет получить несколько образцов за одну процедуру. Это возможно благодаря рукаву для нескольких образцов, который представляет собой гибкий резиновый фитинг на заднем конце канюли иглы , который герметизирует иглу до тех пор, пока она не будет вытолкнута в сторону. Это препятствует свободному вытеканию крови из задней части иглы, вставленной в вену, по мере того, как каждая пробирка вынимается, а следующая протыкается. Правила безопасности OSHA требуют, чтобы иглы или держатели трубок были оснащены защитным устройством, закрывающим иглу после процедуры во избежание случайного укола иглой. [7]
Также доступны фитинги и адаптеры, используемые для наполнения вакуумированных пробирок из наборов игл-бабочек и шприцев. [ нужна ссылка ]
Врач-флеботомист может выбрать один из нескольких размеров игл. Наиболее часто используются следующие: игла 21 г (зеленый верх), игла 22 г (черный верх), игла-бабочка 21 г (зеленая этикетка), игла-бабочка 23 г (голубая этикетка) и игла 25 г (оранжевая или темная). синяя этикетка) игла-бабочка (однако эта игла используется только в педиатрии или в крайних случаях, поскольку она настолько мала, что часто может привести к гемолизу образца крови). Также имеются различные размеры и объемы пробирок и флаконов для различных требований к испытаниям. [8]
Добавки и порядок нанесения
[ редактировать ]Пробирки, в которые собирают кровь, могут содержать одну или несколько добавок. Как правило, тесты, требующие цельной крови, требуют образцов крови, собранных в пробирки, содержащие некоторую форму антикоагулянта ЭДТА . ЭДТА хелатирует кальций, предотвращая образование тромбов. ЭДТА предпочтительнее для гематологических тестов, поскольку она наносит минимальный ущерб морфологии клеток. Цитрат натрия является антикоагулянтом, используемым в образцах, взятых для тестов на коагуляцию. Большинство химических и иммунологических тестов проводится с сывороткой, которую получают путем свертывания и последующего отделения образца крови с помощью центрифуги. Эти образцы собираются либо в пробирку без добавок, либо в пробирку, содержащую активатор свертывания крови . Этот активатор свертывания крови может мешать проведению некоторых анализов , поэтому в таких случаях рекомендуется использовать простую пробирку, но это приведет к задержке анализа. Пробирки, содержащие гепарин лития или гепарин натрия, также часто используются для различных химических анализов, поскольку они не требуют свертывания и могут быть центрифугированы сразу после сбора. Сочетание Фторид натрия и оксалат калия используются для тестов на глюкозу, поскольку эти добавки предотвращают свертывание крови и останавливают гликолиз, поэтому уровень глюкозы в крови сохраняется после сбора. [9] Другая специальная пробирка — непрозрачная пробирка янтарного цвета, используемая для сбора крови на светочувствительные аналиты, такие как билирубин . [ нужна ссылка ]
На пробирках указана содержащаяся в них добавка, но пробка на каждой пробирке также имеет цветовую маркировку в соответствии с добавкой. Хотя цвета различаются у разных производителей, цвета пробок обычно соответствуют каждой добавке, как указано ниже. Поскольку добавки из каждой пробирки можно оставить на игле, используемой для наполнения пробирок, их необходимо набирать в определенном порядке, чтобы гарантировать, что перекрестное загрязнение не окажет отрицательного влияния на тестирование образцов, если необходимо отобрать несколько пробирок одновременно. «Порядок розыгрыша» зависит от метода сбора. Ниже в порядке вытягивания, который обычно требуется для метода сбора с помощью системы вакуумных трубок (ETS), приведены наиболее распространенные пробирки с указанием добавок и цвета: [10] [11]
| Цвет или тип крышки тюбика в порядке рисования. | Добавка | Использование и комментарии |
|---|---|---|
| для культуры крови Бутылка | Полианетолсульфонат натрия ( антикоагулянт ) и питательная среда для микроорганизмов. | Обычно рисуется первым, чтобы минимизировать риск загрязнения. [12] Обычно за один забор крови берут две бутылки; один для аэробных организмов и один для анаэробных организмов . [13] |
| Синий («голубой») | натрия Цитрат (слабый хелатор кальция/ антикоагулянт ) | Коагуляционные тесты, такие как протромбиновое время (ПВ), частичное тромбопластиновое время (ЧТВ) и тромбиновое время (ТТ). Трубка должна быть заполнена на 100%. |
| Обычный красный | Без добавки | Сыворотка : Общая активность комплемента , криоглобулины. |
| Золотой (иногда красно-серый «тигровый верх»). [14] ) | Активатор свертывания крови и для разделения сыворотки гель [15] | Пробирка для отделения сыворотки (SST). Перевернутая пробирка способствует свертыванию крови. Большинство химических, эндокринных и серологических тестов, включая гепатит и ВИЧ . |
| Апельсин | Активатор свертывания крови и для разделения сыворотки гель [16] | быстрого Пробирка для отделения сыворотки (RST). |
| Темно-зеленый | натрия Гепарин (антикоагулянт) | Хромосомное тестирование, типирование HLA , аммиак , лактат |
| Светло-зеленый | Литий- гепарин (антикоагулянт) Плазморазделительный гель | Плазма . Переворот трубок предотвращает свертывание крови |
| Лаванда («фиолетовый») | ЭДТА ( хелатор / антикоагулянт ) | Цельная кровь : общий анализ крови , СОЭ , тест Кумбса , антитела к тромбоцитам, проточная цитометрия , уровни такролимуса и циклоспорина в крови. |
| Розовый | К 2 ЭДТА ( хелатор / антикоагулянт ) | Группа крови и перекрестная совместимость , прямой тест Кумбса , ВИЧ вирусная нагрузка |
| Королевский синий ("военно-морской") | ЭДТА ( хелатор / антикоагулянт ) | Микроэлементы, тяжелые металлы, содержание большинства лекарств, токсикология |
| Тан | Натрий ЭДТА ( хелатор / антикоагулянт ) | Вести |
| Серый | Фторид оксалат
| Глюкоза , лактат, [17] токсикология [18] |
| Желтый | Кислота-цитрат-декстроза А (антикоагулянт) | Типирование тканей , исследования ДНК, ВИЧ посевы |
| Перламутровый («белый») | Разделительный гель и (K 2 ) ЭДТА | ПЦР на аденовирус , токсоплазму и ВГЧ-6 |
| Черный | Цитрат натрия | Детская СОЭ |
| КвантиФЕРОН Серый, Зеленый, Желтый, Фиолетовый | КвантиФЕРОН 1. Серая (нулевая) трубка 2. Зеленая пробирка (антиген ТБ1). 3. Желтая пробирка (антиген ТБ2). 4. Фиолетовая (митогенная) трубка. | Туберкулез |
У детей
[ редактировать ]Использование ионофореза с лидокаином эффективно для уменьшения боли и облегчения дистресса во время венепункции у детей. [19] безыгольная система доставки порошкового лигнокаина уменьшает боль при венепункции у детей. Было показано, что [20] [21] Быстрая кожная анестезия может быть достигнута путем инфильтрации местного анестетика, но она может вызывать беспокойство у детей, напуганных иглами, или деформировать кожу, затрудняя сосудистый доступ и увеличивая риск воздействия иглы на медицинских работников. Кожную анестезию можно также обеспечить без игл путем местного применения местных анестетиков или ионтофореза с лидокаином. Напротив, неинвазивная кожная анестезия может быть достигнута через 5–15 минут без повреждения подлежащих тканей с помощью ионтофореза лидокаина, при котором постоянный электрический ток облегчает проникновение в кожу положительно заряженных молекул лидокаина, когда они помещаются под положительный электрод. [ нужна ссылка ]
Одно исследование пришло к выводу, что ионтофоретическое введение лидокаина безопасно и эффективно для кожной анестезии при венепункции у детей 6–17 лет. Этот метод может быть применим не ко всем детям. Будущие исследования могут предоставить информацию о минимальной эффективной дозе ионофореза для кожной анестезии у детей, а также о сравнении анестезиологической эффективности и удовлетворенности ионтофорезом лидокаина с местными анестезирующими кремами и подкожной инфильтрацией. [19]
Нефармакологические методы лечения боли, связанной с венепункцией у детей, включают гипноз и отвлечение внимания. Эти методы лечения уменьшили боль, о которой сообщали сами пациенты, а в сочетании с когнитивно-поведенческой терапией (КПТ) уменьшение боли было еще больше. Другие вмешательства не оказались эффективными, а именно внушение, выдувание воздуха и отвлечение внимания при обучении родителей не отличались от контроля боли и дистресса. [22]
С иглой и шприцем
[ редактировать ]Некоторые медицинские работники предпочитают использовать шприц для венепункции -иглу. Компания Sarstedt производит систему взятия крови (S-Monovette), использующую этот принцип. [23] Этот метод можно предпочесть пожилым людям, больным раком, тяжелыми ожогами, ожирением или при ненадежных или хрупких венах. Поскольку шприцы управляются вручную, величину всасывания можно легко контролировать. Это особенно полезно, когда вены маленькие и могут разрушиться под действием вакуумированной трубки. У детей или в других обстоятельствах, когда количество полученной крови может быть ограничено, может быть полезно знать, сколько крови можно получить, прежде чем распределять ее между различными добавками, которые потребуются в лаборатории. Другой альтернативой является взятие крови из постоянной канюли. [24]
Культуры крови
[ редактировать ]Бывают случаи, когда требуется сбор крови на посев. Посев определит, есть ли в крови болезнетворные микроорганизмы. В норме кровь стерильна. При заборе крови из посевов используйте стерильный раствор, например бетадин, а не спирт . Делают это в стерильных перчатках, при этом не вытирая хирургический раствор, не прикасаясь к месту прокола и каким-либо образом не нарушая стерильность процесса. Крайне важно, чтобы процедура выполнялась как можно более стерильно, поскольку постоянное присутствие комменсалов кожи в культурах крови может указывать на эндокардит , но чаще всего они обнаруживаются в качестве контаминантов.Рекомендуется использовать абразивный метод подготовки кожи. Это удаляет верхние слои омертвевших клеток кожи вместе с загрязняющими их бактериями. [25] Традиционно использовался повидон-йод, но в Великобритании предпочтительным является 2% хлоргексидин в 70% растворе этанола или изопропилового спирта, и необходимо дать ему время высохнуть. Верхние части контейнеров, используемых при взятии посева крови, также следует дезинфицировать аналогичным раствором. Некоторые лаборатории активно препятствуют использованию йода, если считается, что йод разрушает резиновую пробку, через которую кровь попадает в бутылку, что позволяет загрязняющим веществам проникнуть в контейнер. [ нужна ссылка ]
Кровь собирается в специальные транспортировочные бутыли, которые похожи на вакуумные трубки, но имеют другую форму. Бутылка для посева крови содержит транспортную среду для сохранения любых присутствующих микроорганизмов во время их транспортировки в лабораторию для посева. Поскольку неизвестно, являются ли патогены анаэробными (живущими без кислорода) или аэробными (живущими с кислородом), кровь собирают для проверки обоих типов. Сначала наполняется аэробная бутыль, а затем – анаэробная бутыль. Однако если сбор проводится с помощью шприца, сначала заполняется анаэробная бутыль. Если используется набор для сбора бабочек, сначала наполняют аэробную бутылку, чтобы весь воздух из трубки вышел в кислородсодержащую бутылку. [ нужна ссылка ]
Специально разработанные флаконы для сбора культуры крови устраняют необходимость в методе сбора крови шприцем или бабочкой. Эти специально разработанные бутылочки имеют длинные горлышки, которые подходят к держателям вакуумных пробирок, которые используются для регулярного взятия проб из вены. Эти бутыли также позволяют собирать другие образцы крови через вакуумные трубки без дополнительной венепункции. [ нужна ссылка ]
Количество собираемой крови имеет решающее значение для оптимального восстановления микроорганизмов. Обычно объем крови составляет до 10 мл, но может варьироваться в зависимости от рекомендаций производителя бутыли для сбора. Сбор у младенцев и детей составляет от 1 до 5 мл. Если собрано слишком мало крови, соотношение крови и питательных веществ в бульоне будет подавлять рост микроорганизмов. Если собрано слишком много крови, существует риск возникновения внутрибольничной анемии, и соотношение крови и питательных веществ в бульоне будет наклоняться в противоположном направлении, что также не способствует оптимальному росту. [ нужна ссылка ]
Затем флаконы инкубируют в специализированных отделениях в течение 24 часов, после чего лаборант изучает и/или тестирует их. Этот шаг позволяет очень небольшому количеству бактерий (возможно, 1 или 2 организмам) размножиться до уровня, достаточного для идентификации +/- тестирования на устойчивость к антибиотикам. Современные флаконы для посева крови имеют в основании индикатор, который меняет цвет при наличии роста бактерий и может автоматически считываться машиной. (По этой причине наклейки со штрих-кодом, обнаруженные на этих флаконах, не следует удалять, поскольку они используются автоматизированными системами лаборатории.) [ нужна ссылка ]
Взятие проб крови у животных
[ редактировать ]Образцы крови живых лабораторных животных могут быть взяты следующими методами: [26] [27]
- Забор крови, не требующий анестезии:
- Подкожная вена (крысы, мыши, морские свинки)
- Дорсальная педальная вена (крысы, мыши)
- Забор крови, требующий анестезии (местная/общая анестезия):
- Хвостовая вена (крысы, мыши)
- Отрезание хвоста (мыши)
- Орбитальный синус (крысы, мыши)
- Яремная вена (крысы, мыши)
- Временная канюля (крыса, мыши)
- Канюляция кровеносных сосудов (морская свинка, хорек)
- Тарзальная вена (морская свинка)
- Краевая ушная вена или артерия (кролик)
- Терминальная процедура:
- Сердечная пункция (крыса, мышь, морская свинка, кролик, хорек)
- Орбитальный синус (крысы, мыши)
- Задняя полая вена (крысы, мыши)
У экспериментальных животных очень важен объем взятого образца крови. Любой нетерминальный сбор крови без замены жидкостей ограничивается до 10% от общего объема циркулирующей крови у здоровых, нормальных, взрослых животных в одном случае, и сбор может быть повторен через три-четыре недели. Если требуются повторные образцы крови через короткие промежутки времени, каждые 24 часа можно брать максимум 0,6 мл/кг/день или 1,0% от общего объема крови животного. Расчетный объем крови у взрослых животных составляет от 55 до 70 мл/кг массы тела. Особое внимание следует уделить пожилым животным и животным, страдающим ожирением. Если объем взятой крови превышает более 10% от общего объема крови, может потребоваться замена жидкости. Раствор Рингера с лактатом (LRS) рекомендован Национальными институтами здравоохранения (NIH) в качестве лучшей замены жидкости. Если объем взятой крови превышает более 30% общего объема циркулирующей крови, следует принять адекватные меры предосторожности, чтобы у животного не развилась гиповолемия. [27]
Тесты на алкоголь в крови
[ редактировать ]Обычно не рекомендуется использовать изопропиловый спирт для очистки места венепункции при получении образца для анализа на алкоголь в крови . Это в основном связано с потенциальными юридическими последствиями, связанными с использованием чистящих средств на спиртовой основе, которые теоретически могут повлиять на анализ. На рынке продаются многочисленные полицейские наборы для сбора алкоголя, которые включают консервант фторид натрия / оксалат калия и чистящие средства, не содержащие спирта, для обеспечения надлежащего сбора. использование мыла и горячей воды или тампона с повидон-йодом . В этом случае целесообразной альтернативой изопропиловому спирту является [ нужна ссылка ]
См. также
[ редактировать ]- Артериальную кровь берут из артерии, а не из вены.
Ссылки
[ редактировать ]- ^ Jump up to: а б Хиггинс, Дэн (28 сентября 2004 г.). «Венепунктура» . Время медсестер . 100 (39): 30–1. ПМИД 15500234 . Архивировано из оригинала 2 января 2020 года.
- ^ Дг, Дайял (22 мая 2018 г.). «Методика забора крови для гематологических исследований» . Бионауки Пакистана . ISSN 2521-5760 . Архивировано из оригинала 18 сентября 2020 г.
- ^ Лавери, я; Ингрэм, П. (август 2005 г.). «Венепунктура: лучшая практика». Стенд Нурс . 19 (49): 55–65. дои : 10.7748/ns2005.08.19.49.55.c3936 . ПМИД 16134421 .
- ^ Ялонго, Криштиану; Бернардини, Серджио (15 февраля 2016 г.). «Флеботомия – мост между лабораторией и пациентом» . Биохимия медика . 26 (1): 17–33. дои : 10.11613/BM.2016.002 . ISSN 1330-0962 . ПМЦ 4783087 . ПМИД 26981016 .
- ^ Джапенга, Энн (30 мая 2006 г.). « Небольшой укус может стать изнурительной травмой» . Нью-Йорк Таймс . Проверено 25 марта 2020 г.
- ^ Нельсон, Анджела. «Что такое флеботомия?» . ВебМД . Проверено 1 февраля 2024 г.
- ^ МакКолл, Рут (2020). Основы флеботомии (7-е изд.). Уолтерс Клювер. п. 193. ИСБН 9781496387073 .
- ^ Перри, Салли (2007). «Спросите лабораторию: гемолиз образцов крови» . Nursing.advanceweb.com . Проверено 29 декабря 2013 г.
- ^ Jump up to: а б Кастеллини М.А., Кастеллини Дж.М., Кирби В.Л. (1992). «Влияние стандартных антикоагулянтов и процедур хранения на уровень глюкозы в плазме у тюленей» . J Am Vet Med Assoc . 201 (1): 145–8. ПМИД 1644639 .
- ^ «Коллекция» . www.osfhealthcare.org . Проверено 8 декабря 2019 г.
- ^ Кристофер Паркер (31 января 2019 г.). «Услуги флеботомии» . Медицинский факультет Университета Северной Каролины .
- ^ Пагана, К.Д.; Пагана, Ти Джей; Пагана, Теннесси (19 сентября 2014 г.). Справочник Мосби по диагностическим и лабораторным тестам — электронная книга . Elsevier Науки о здоровье. п. xiii. ISBN 978-0-323-22592-2 .
- ^ «Глава 3.4.1: Культуры крови; общее обнаружение и интерпретация». Справочник по клиническим микробиологическим процедурам . Уайли. 6 августа 2020 г. ISBN 978-1-55581-881-4 .
- ^ «Руководство по пробиркам и порядок отбора» (PDF) . Лабораторные службы Гатри . Июнь 2019.
- ^ «Требования к образцам/контейнерам» . Патология и лабораторная медицина, Медицинский факультет UCI . Проверено 10 сентября 2020 г.
- ^ «Правильный порядок розыгрыша» (PDF) . Службы Мемориальной лаборатории . Проверено 15 июня 2023 г.
- ^ Амитава Дасгупта; Хорхе Л. Сепульведа (20 июля 2019 г.). Точные результаты в клинической лаборатории: Руководство по обнаружению и исправлению ошибок . Эльзевир Наука. п. 131. ИСБН 978-0-12-813777-2 .
- ^ «Какие типы проб будет анализировать токсикологическая лаборатория?» . Бюро расследований штата Оклахома . Проверено 24 января 2024 г.
- ^ Jump up to: а б Роуз, Джон Б.; Галинкин, Джеффри Л.; Янцен, Эллен С.; Кьяваччи, Розетта М. (2002). «Исследование ионтофореза лидокаина для детской венепункции» . Анестезия и анальгезия . 94 (4): 867–71, оглавление. дои : 10.1097/00000539-200204000-00017 . ПМИД 11916787 . S2CID 25591907 .
- ^ Лакруа, Элен (октябрь 2008 г.). «Безыгольная система доставки порошкового лигнокаина уменьшила боль при венепункции у детей». Доказательная медицинская помощь . 11 (4): 106. дои : 10.1136/ебн.11.4.106 . ПМИД 18815318 . S2CID 44888650 .
- ^ Робертсон, Дж. (январь 2006 г.). «Липосомальный лидокаин улучшил показатели успеха внутривенной канюляции у детей». Медсестры на базе Эвида . 9 (1): 10. дои : 10.1136/ебн.9.1.10 . ПМИД 16437788 . S2CID 45422187 .
- ^ Робертсон, Дж (июль 2007 г.). «Обзор: отвлечение, гипноз и комбинированные когнитивно-поведенческие вмешательства уменьшают боль и дистресс, связанные с иглой, у детей и подростков». Медсестры на базе Эвида . 10 (3):75. дои : 10.1136/ебн.10.3.75 . ПМИД 17596380 . S2CID 34364928 .
- ^ «Забор крови с помощью S-Monovette» (PDF) . Проверено 27 мая 2020 г.
- ^ Лессер, Финниан Д; Лэнхэм, Дэвид А; Дэвис, Дэниел (6 мая 2020 г.). «Образец крови, взятый из существующих периферических канюль для внутривенного вливания, дает результаты, эквивалентные венепункции: систематический обзор» . JRSM Открыть . 11 (5). дои : 10.1177/2054270419894817 . ПМЦ 7236571 . ПМИД 32523703 .
- ^ Гарсия, РА; Спитцер, Эд; Бодри, Дж; Бек, К; Дибласи, Р; Гиллини-Блабак, М; Хаугард, К; Хойшнейдер, С; Кранц, БП; Маклин, К; Моралес, КЛ; Оуэнс, С; Пасиелла, Мэн; Торрегроса, Э. (ноябрь 2015 г.). «Мультидисциплинарный групповой обзор передового опыта сбора и обработки культур крови для определения эффективных мер по увеличению количества истинно положительных бактериемий, снижению контаминации и устранению ложноположительных инфекций кровотока, связанных с центральной линией». Am J Инфекционный контроль . 43 (11): 1222–37. дои : 10.1016/j.ajic.2015.06.030 . ПМИД 26298636 .
- ^ Хофф, Дж. (2000). «Методы сбора крови у мышей» (PDF) . Лабораторное животное . 29 (10): 47–53. Архивировано из оригинала (PDF) 15 сентября 2012 г. Проверено 29 декабря 2013 г.
- ^ Jump up to: а б Парасураман, С; Равендран, Р; Кесаван, Р. (2010). «Отбор проб крови у мелких лабораторных животных» . Журнал фармакологии и фармакотерапии . 1 (2): 87–93. дои : 10.4103/0976-500X.72350 . ПМЦ 3043327 . ПМИД 21350616 .
| Базы данных органов управления : Национальные |
|---|
