Jump to content

Активная зона

Активная зона
Схема типичного синапса центральной нервной системы. Белки активной зоны представлены темно-коричневыми пирамидками на верхнем нейронном окончании.
Подробности
Идентификаторы
латинский активная зона
ТД Х2.00.06.2.00012
Анатомические термины микроанатомии

Активная зона или синаптическая активная зона — это термин, впервые использованный Куто и Пеко-Дешавассиненом в 1970 году для определения места высвобождения нейротрансмиттера . Два нейрона вступают в тесный контакт через структуры, называемые синапсами, позволяющие им общаться друг с другом. Как показано на диаграмме рядом, синапс состоит из пресинаптического бутона одного нейрона, который хранит пузырьки , содержащие нейротрансмиттер (самый верхний на рисунке), и второго, постсинаптического нейрона, несущего рецепторы нейромедиатора (внизу), вместе с разрыв между ними, называемый синаптической щелью (с молекулами синаптической адгезии, SAM, удерживающими их вместе [1] ). Когда потенциал действия достигает пресинаптического бутона, содержимое везикул высвобождается в синаптическую щель, а высвободившийся нейромедиатор проходит через щель к постсинаптическому нейрону (нижняя структура на рисунке) и активирует рецепторы на постсинаптической мембране.

Активная зона — это область пресинаптического бутона, которая обеспечивает высвобождение нейромедиатора и состоит из пресинаптической мембраны и плотного скопления белков, называемого цитоматрицей в активной зоне (CAZ). CAZ рассматривается под электронным микроскопом как темная (электронно-плотная) область, расположенная рядом с мембраной. Белки внутри CAZ привязывают синаптические пузырьки к пресинаптической мембране и опосредуют слияние синаптических пузырьков , тем самым позволяя нейромедиатору надежно и быстро высвобождаться при появлении потенциала действия.

Функция [ править ]

Функция активной зоны заключается в том, чтобы гарантировать, что нейротрансмиттеры могут надежно высвобождаться в определенном месте нейрона и высвобождаться только тогда, когда нейрон запускает потенциал действия. [2] По мере того, как потенциал действия распространяется вниз по аксону, он достигает окончания аксона, называемого пресинаптическим бутоном. В пресинаптическом бутоне потенциал действия активирует кальциевые каналы (VDCC), которые вызывают локальный приток кальция. Увеличение кальция фиксируется белками активной зоны и заставляет пузырьки, содержащие нейротрансмиттер, сливаться с мембраной. В результате слияния везикул с мембраной нейротрансмиттеры высвобождаются в синаптическую щель (пространство между пресинаптической бутоном и постсинаптической мембраной). Затем нейротрансмиттеры диффундируют через щель и связываются с лиганд-зависимыми ионными каналами и рецепторами, связанными с G-белком, на постсинаптической мембране. Связывание нейротрансмиттеров с постсинаптическими рецепторами затем вызывает изменения в постсинаптическом нейроне. Процесс высвобождения нейромедиаторов и связывания с постсинаптическим рецептором, вызывающий изменения в постсинаптическом нейроне, называется нейротрансмиссией.

Структура [ править ]

Схема белков, обнаруженных в активной зоне

Активная зона присутствует во всех исследованных до сих пор химических синапсах и присутствует у всех видов животных. Рассмотренные до сих пор активные зоны имеют по крайней мере две общие черты: все они имеют плотный белковый материал, который выступает из мембраны и привязывает синаптические везикулы близко к мембране, а также имеют длинные нитевидные отростки, берущие начало у мембраны и заканчивающиеся везикулами, расположенными немного дальше от мембраны. пресинаптическая мембрана. Плотные выступы белка различаются по размеру и форме в зависимости от типа исследуемого синапса. Одним из ярких примеров плотной проекции является ленточный синапс (см. ниже), который содержит «ленту» из плотного белкового материала, окруженную ореолом синаптических пузырьков и простирающуюся перпендикулярно пресинаптической мембране, а ее длина может достигать 500 нм. [3] Глутаматный синапс содержит более мелкие пирамидоподобные структуры, которые простираются примерно на 50 нм от мембраны. [4] Нервно-мышечный синапс содержит два ряда везикул с длинной белковой полоской между ними, соединенной с равномерно расположенными горизонтальными ребрами, идущими перпендикулярно полоске и параллельно мембране. Эти ребра затем соединяются с пузырьками, каждый из которых расположен над выступом в мембране (предположительно кальциевым каналом). [5] Предыдущие исследования показали, что активная зона глутаматергических нейронов содержит очень регулярный массив плотного белкового материала пирамидальной формы, и указали на то, что эти пирамиды соединены нитями. Эта структура напоминала геометрическую решетку, в которой везикулы направлялись в отверстия решетки. [4] Эта привлекательная модель оказалась под вопросом в результате недавних экспериментов. Недавние данные показывают, что глутаматергическая активная зона действительно содержит выступы плотного белкового материала, но эти выступы не располагались в регулярном порядке и содержали длинные нити, выступающие в цитоплазму примерно на 80 нм. [6]

Существует по крайней мере пять основных каркасных белков, которые сосредоточены в активной зоне; UNC13B /Munc13, RIMS1 (молекула, взаимодействующая с Rab3), Фагот, Пикколо /aczonin, ELKS и липрины-α . Считается, что эти каркасные белки являются составляющими плотных пирамидоподобных структур активной зоны и, как полагают, приближают синаптические пузырьки к пресинаптической мембране и кальциевым каналам. Белок ELKS связывается с белком клеточной адгезии , β-нейрексином и другими белками в составе комплекса, такими как Piccolo и Bassoon. [7] Затем β-нейрексин связывается с молекулой клеточной адгезии нейролигином , расположенной на постсинаптической мембране. Затем нейролигин взаимодействует с белками, которые связываются с постсинаптическими рецепторами. Белковые взаимодействия, подобные тем, которые наблюдаются между пикколо/ELKS/β-нейрексином/нейролигином, гарантируют, что механизм, который опосредует слияние везикул, находится в непосредственной близости от кальциевых каналов и что слияние везикул примыкает к постсинаптическим рецепторам. Такое близкое слияние везикул и постсинаптических рецепторов обеспечивает небольшую задержку между активацией постсинаптических рецепторов и высвобождением нейротрансмиттеров.

высвобождения Механизм нейротрансмиттера

Механизм высвобождения везикул. [8]

Высвобождение нейромедиатора осуществляется путем слияния везикул нейромедиатора с пресинаптической мембраной. Хотя детали этого механизма все еще изучаются, существует консенсус по некоторым деталям процесса. Известно, что слияние синаптических пузырьков с пресинаптической мембраной требует местного увеличения кальция. [9] всего лишь из одного, тесно связанных кальциевых каналов [10] и образование высокостабильных комплексов SNARE . Одна из преобладающих моделей слияния синаптических пузырьков заключается в том, что образование комплекса SNARE катализируется белками активной зоны, такими как Munc18, Munc13 и RIM. Считается, что образование этого комплекса «готовит» везикулу к слиянию везикул и высвобождению нейротрансмиттера (см. ниже: высвобождаемый пул). После того, как везикула примирована, комплексин связывается с комплексом SNARE, это называется «суперпримированием». Суперпраймированные везикулы находятся в легко высвобождаемом пуле (см. ниже) и готовы к быстрому высвобождению. Появление потенциала действия открывает потенциалзависимые кальциевые каналы вблизи комплекса SNARE/комплексин. Затем кальций связывается, изменяя конформацию синаптотагмина . Это изменение конформации позволяет синаптотагмину затем вытеснять комплексин, связываться с комплексом SNARE и связываться с целевой мембраной. Когда синаптотагмин связывается как с комплексом SNARE, так и с мембраной, это вызывает механическое воздействие на мембрану, вызывающее слияние мембраны везикул и пресинаптической мембраны. Это слияние открывает мембранную пору, которая высвобождает нейромедиатор. Пора увеличивается в размерах до тех пор, пока вся мембрана пузырька не станет неотличима от пресинаптической мембраны. [11] [12] [13]

Цикл синаптических пузырьков [ править ]

Пресинаптическая активная зона и цикл синаптических пузырьков

Пресинаптический бутон имеет эффективно организованный процесс слияния везикул с пресинаптической мембраной для высвобождения нейротрансмиттеров и регенерации везикул нейромедиаторов. Этот процесс, называемый циклом синаптических пузырьков, поддерживает количество пузырьков в пресинаптическом бутоне и позволяет синаптическому терминалу быть автономной единицей. Цикл начинается с (1) участка аппарата Гольджи отщемляется с образованием синаптического пузырька, и этот везикула транспортируется к синаптическому окончанию. На конце (2) везикула заполнена нейромедиатором. (3) Везикула транспортируется в активную зону и пристыковывается в непосредственной близости к плазматической мембране. (4) Во время потенциала действия везикула сливается с мембраной, высвобождает нейромедиатор и позволяет мембранным белкам, ранее находящимся на везикуле, диффундировать в периактивную зону. (5) В периактивной зоне мембранные белки секвестрируются и эндоцитозируются, образуя везикулу , покрытую клатрином . (6) Затем везикула наполняется нейротрансмиттером и транспортируется обратно в активную зону.

Механизм эндоцитоза медленнее механизма экзоцитоза . Это означает, что при интенсивной активности везикула в терминале может истощиться и стать недоступной для высвобождения. Чтобы предотвратить истощение синаптических везикул, увеличение содержания кальция во время интенсивной активности может активировать кальциневрин , который дефосфорилирует белки, участвующие в клатрин-опосредованном эндоцитозе. [14]

Пулы везикул [ править ]

Синапс содержит по крайней мере два кластера синаптических пузырьков: легковысвобождаемый пул и резервный пул. Легковысвобождаемый пул расположен внутри активной зоны и непосредственно связан с пресинаптической мембраной, тогда как резервный пул кластеризован цитоскелетом и не связан напрямую с активной зоной.

Высвобождаемый пул [ править ]

Высвобождаемый пул расположен в активной зоне и связан непосредственно с пресинаптической мембраной. Он стабилизируется белками активной зоны и связывается с пресинаптической мембраной белками SNARE . Эти везикулы готовы к высвобождению посредством единственного потенциала действия и пополняются везикулами из резервного пула. Высвобождаемый пул иногда подразделяют на легковысвобождаемый пул и освобождаемый пул.

Резервный пул [ править ]

Резервный пул не связан напрямую с активной зоной. Увеличение пресинаптической концентрации кальция активирует кальций-кальмодулин-зависимую протеинкиназу (СаМК). СаМК фосфорилирует белок синапсин , который обеспечивает кластеризацию везикул резервного пула и прикрепление к цитоскелету. Фосфорилирование синапсина мобилизует везикулы в резервном пуле и позволяет им мигрировать в активную зону и пополнять легковысвобождаемый пул. [15] [16]

Периактивная зона [ править ]

Периактивная зона окружает активную зону и является местом эндоцитоза пресинаптического окончания. В периактивной зоне каркасные белки, такие как интерсектин 1, рекрутируют белки, которые опосредуют эндоцитоз, такие как динамин , клатрин и эндофилин. [17] У дрозофилы гомолог интерсектина, Dap160, расположен в периактивной зоне нервно-мышечного соединения, а мутантный Dap160 истощает синаптические пузырьки во время высокочастотной стимуляции. [18]

Активная зона ленточного синапса [ править ]

Ленточный синапс представляет собой особый тип синапса, обнаруженный в сенсорных нейронах , таких как фоторецепторные клетки , биполярные клетки сетчатки и волосковые клетки . Ленточные синапсы содержат плотную белковую структуру, которая связывает множество везикул перпендикулярно пресинаптической мембране. На электронной микрофотографии он выглядит как лентообразная структура, перпендикулярная мембране. В отличие от «традиционных» синапсов, ленточные синапсы могут поддерживать постепенное высвобождение везикул. Другими словами, чем более деполяризован нейрон, тем выше скорость слияния пузырьков. Активная зона ленточного синапса разделена на две области: архиформную плотность и ленту. Архиформная плотность является местом слияния везикул, а лента хранит высвобождаемый пул везикул. Ленточная структура состоит в основном из белка RIBEYE, составляющего около 64–69% объема ленты, и привязана к архиформной плотности с помощью каркасных белков, таких как Bassoon. [19]

Белки [ править ]

Белок Структура/Функция
Структурные белки
Маленький
Для баса
RIM-диски
ELKS (ERC или CAST)
БОЧКА
Как
Липрин-альфа-1
Стыковка и грунтовка
Работа-13
Работа-18
ЛОВУШКИ
SNAP25
ВАМП2
синтаксин Расположен на синаптической мембране и связывается с SNAP-25 и синаптобревином, опосредуя слияние везикул.
Цитоскелетные белки
Актин
Тубулин
миозин Множественные молекулы миозина II генерируют силу в скелетных мышцах посредством механизма силового удара, подпитываемого энергией, высвобождаемой в результате гидролиза АТФ.
спектрин
β-катенин
Кальциевый канал
Потенциал-зависимый кальциевый канал (VDCC) Обеспечивает быстрый приток кальция во время потенциала действия.

нейротрансмиттеров высвобождения Измерение

Диаграмма, показывающая изменение емкости мембраны до (вверху) и после (средний и нижний) слияния пузырьков.

Высвобождение нейромедиатора можно измерить путем определения амплитуды постсинаптического потенциала после запуска потенциала действия в пресинаптическом нейроне. Измерение высвобождения нейромедиатора таким способом может быть проблематичным, поскольку эффект постсинаптического нейрона на одно и то же количество высвобождаемого нейромедиатора может меняться со временем. Другой способ — измерить слияние пузырьков с пресинаптической мембраной непосредственно с помощью патч-пипетки . Клеточную мембрану можно рассматривать как конденсатор , в котором положительные и отрицательные ионы накапливаются по обе стороны мембраны. Чем больше площадь мембраны, тем больше ионов необходимо для поддержания определенного потенциала мембраны. В электрофизиологии это означает, что введение тока в терминал займет меньше времени, чтобы зарядить мембрану до заданного потенциала до слияния пузырьков, чем после слияния пузырьков. Время зарядки мембраны до потенциала и измеряется сопротивление мембраны, и с помощью этих значений емкость мембраны может быть рассчитана по уравнению Тау/Сопротивление = Емкость. С помощью этого метода исследователи могут напрямую измерить высвобождение синаптических пузырьков, измеряя увеличение мембранной емкости пресинаптического терминала. [20]

См. также [ править ]

Ссылки [ править ]

  1. ^ Мисслер М, Зюдхоф ТЦ, Бидерер Т (2012). «Синаптическая клеточная адгезия» . Колд Спринг Харб Перспектива Биол . 4 (4): а005694. doi : 10.1101/cshperspect.a005694 . ПМК   3312681 . ПМИД   22278667 .
  2. ^ Крейг К. Гарнер и Кан Шен. Структура и функции активных зон позвоночных и беспозвоночных. Структура и функциональная организация синапса. Эд: Йоханнес Хелл и Майкл Элерс. Спрингер, 2008.
  3. ^ Чжай Р. Грейс; Беллен Хьюго Дж. (2004). «Архитектура активной зоны пресинаптического нервного окончания». Физиология . 19 (5): 262–270. дои : 10.1152/физиол.00014.2004 . ПМИД   15381754 . S2CID   9609266 .
  4. ^ Jump up to: Перейти обратно: а б Филлипс ГР; и др. (2001). «Сеть пресинаптических частиц: ультраструктура, состав, растворение и восстановление» . Нейрон . 32 (1): 63–77. дои : 10.1016/s0896-6273(01)00450-0 . ПМИД   11604139 . S2CID   5996555 .
  5. ^ Марк Л.; и др. «Харлоу и др. Архитектура материала активной зоны нервно-мышечного соединения лягушки». Природа . 409 : 2001.
  6. ^ Сиксу; и др. (2007). «Трехмерная архитектура пресинаптической терминальной цитоматрицы» . Журнал неврологии . 27 (26): 6868–6877. doi : 10.1523/jneurosci.1773-07.2007 . ПМК   6672225 . ПМИД   17596435 .
  7. ^ Зив, Гарнер (2004). «Клеточные и молекулярные механизмы пресинаптической сборки». Обзоры природы Неврология . 5 (5): 385–399. дои : 10.1038/nrn1370 . ПМИД   15100721 . S2CID   21516580 .
  8. ^ Георгиев, Данко Д.; Джеймс Ф. Глейзбрук (2007). «Субнейронная обработка информации одиночными волнами и случайными процессами» . В Лышевском, Сергей Эдвард (ред.). Справочник по нано- и молекулярной электронике . Серия «Нано и микроинженерия». ЦРК Пресс. стр. 17-1–17-41. дои : 10.1201/9781315221670-17 . ISBN  978-0-8493-8528-5 . S2CID   199021983 .
  9. ^ Гейдельбергер; и др. (1994). «Кальций-зависимость скорости экзоцитоза в синаптическом терминале». Природа . 371 (6497): 513–515. Бибкод : 1994Natur.371..513H . дои : 10.1038/371513a0 . ПМИД   7935764 . S2CID   4316464 .
  10. ^ Стэнли Э.Ф. (1993). «Одиночные кальциевые каналы и высвобождение ацетилхолина в пресинаптическом нервном окончании». Нейрон . 11 (6): 1007–1011. дои : 10.1016/0896-6273(93)90214-c . ПМИД   8274272 . S2CID   7311805 .
  11. ^ Атасой и Кавалали. Механизм высвобождения нейромедиаторов: компоненты нейронального комплекса SNARE и их функции. Структурная и функциональная организация синаптического ада и Элерса (ред.), 2008 г.
  12. ^ Панг З.; Судхоф Т. (2010). «Клеточная биология экзоцитоза, запускаемого Ca2+» . Современное мнение в области клеточной биологии . 22 (4): 496–505. дои : 10.1016/j.ceb.2010.05.001 . ПМЦ   2963628 . ПМИД   20561775 .
  13. ^ Карр К.; Мансон М. (2007). «Отметить командное действие в синапсе» . Отчеты ЭМБО . 8 (9): 834–838. дои : 10.1038/sj.embor.7401051 . ЧВК   1973957 . ПМИД   17767192 .
  14. ^ Юнг Надя; Хауке Волкер (2007). «Клатрин-опосредованный эндоцитоз в синапсах» . Трафик . 8 (9): 1129–1136. дои : 10.1111/j.1600-0854.2007.00595.x . ПМИД   17547698 . S2CID   11320827 .
  15. ^ Пинг Чи; Пол Грингард; Тимоти А. Райан (10 апреля 2003 г.). «Мобилизация синаптических везикул регулируется различными путями фосфорилирования синапсина I с разной частотой» . Нейрон . 38 (1): 69–78. дои : 10.1016/S0896-6273(03)00151-X . ПМИД   12691665 . S2CID   17405359 .
  16. ^ Сеска и др. (2010) Синапсины: ключевые участники функции и пластичности синапсов. Прогресс нейробиологии. Том. 91. 313-348.
  17. ^ Дергай; и др. (2010). «Интерсектин 1 образует комплексы с SGIP1 и Reps1 в ямках, покрытых клатрином». Связь с биохимическими и биофизическими исследованиями . 402 (2): 408–413. дои : 10.1016/j.bbrc.2010.10.045 . ПМИД   20946875 .
  18. ^ Мари; и др. (2004). «Dap160/Intersectin поддерживает периактивную зону для достижения высокоточного эндоцитоза и нормального синаптического роста» . Нейрон . 43 (2): 207–219. дои : 10.1016/j.neuron.2004.07.001 . ПМИД   15260957 . S2CID   16296285 .
  19. ^ Джордж Занацци и Гэри Мэтьюз. Молекулярная архитектура ленточных пресинаптических терминалей. Мол Нейробиол (2009) 39: 130-148.
  20. ^ Герсдорф Х. и Мэтьюз Г. (1994)Динамика слияния синаптических пузырьков и восстановления мембран в синаптических окончаниях. Природа. Том 367. 735-739.
Arc.Ask3.Ru: конец переведенного документа.
Arc.Ask3.Ru
Номер скриншота №: 82657220e22a9ec50c86a10007fede55__1669115460
URL1:https://arc.ask3.ru/arc/aa/82/55/82657220e22a9ec50c86a10007fede55.html
Заголовок, (Title) документа по адресу, URL1:
Active zone - Wikipedia
Данный printscreen веб страницы (снимок веб страницы, скриншот веб страницы), визуально-программная копия документа расположенного по адресу URL1 и сохраненная в файл, имеет: квалифицированную, усовершенствованную (подтверждены: метки времени, валидность сертификата), открепленную ЭЦП (приложена к данному файлу), что может быть использовано для подтверждения содержания и факта существования документа в этот момент времени. Права на данный скриншот принадлежат администрации Ask3.ru, использование в качестве доказательства только с письменного разрешения правообладателя скриншота. Администрация Ask3.ru не несет ответственности за информацию размещенную на данном скриншоте. Права на прочие зарегистрированные элементы любого права, изображенные на снимках принадлежат их владельцам. Качество перевода предоставляется как есть. Любые претензии, иски не могут быть предъявлены. Если вы не согласны с любым пунктом перечисленным выше, вы не можете использовать данный сайт и информация размещенную на нем (сайте/странице), немедленно покиньте данный сайт. В случае нарушения любого пункта перечисленного выше, штраф 55! (Пятьдесят пять факториал, Денежную единицу (имеющую самостоятельную стоимость) можете выбрать самостоятельно, выплаичвается товарами в течение 7 дней с момента нарушения.)