Jump to content

Грибок

Страница полузащищена

Грибы
Коллаж из пяти грибов (по часовой стрелке сверху слева): гриб с плоской красной верхушкой с белыми пятнами и белым стеблем, растущим на земле; красный чашеобразный гриб, растущий на древесине; стопка ломтиков зеленого и белого заплесневелого хлеба на тарелке; микроскопическая сферическая серая полупрозрачная клетка, рядом с которой находится сферическая клетка меньшего размера; микроскопический вид удлиненной клеточной структуры, имеющей форму микрофона, прикрепленной к большему концу, представляет собой ряд более мелких примерно круглых элементов, которые вместе образуют массу вокруг нее.
Clockwise from top left:
Scientific classification Edit this classification
Domain:Eukaryota
Clade:Obazoa
(unranked):Opisthokonta
Clade:Holomycota
Kingdom:Fungi
(L.) R.T.Moore[1]
Subkingdoms/phyla

Гриб ( мн .: грибы [2] или грибки [3] ) — любой член группы эукариотических организмов, в которую входят такие микроорганизмы, как дрожжи и плесень , а также более знакомые грибы . Эти организмы классифицируются как одно из традиционных эукариотических царств , наряду с Animalia , Plantae и Protista. [4] или Простейшие и Хромиста . [5]

A characteristic that places fungi in a different kingdom from plants, bacteria, and some protists is chitin in their cell walls. Fungi, like animals, are heterotrophs; they acquire their food by absorbing dissolved molecules, typically by secreting digestive enzymes into their environment. Fungi do not photosynthesize. Growth is their means of mobility, except for spores (a few of which are flagellated), which may travel through the air or water. Fungi are the principal decomposers in ecological systems. These and other differences place fungi in a single group of related organisms, named the Eumycota (true fungi or Eumycetes), that share a common ancestor (i.e. they form a monophyletic group), an interpretation that is also strongly supported by molecular phylogenetics. This fungal group is distinct from the structurally similar myxomycetes (slime molds) and oomycetes (water molds). The discipline of biology devoted to the study of fungi is known as mycology (from the Greek μύκης mykes, mushroom). In the past, mycology was regarded as a branch of ботаники , хотя сейчас известно, что грибы генетически более тесно связаны с животными, чем с растениями.

Abundant worldwide, most fungi are inconspicuous because of the small size of their structures, and their cryptic lifestyles in soil or on dead matter. Fungi include symbionts of plants, animals, or other fungi and also parasites. They may become noticeable when fruiting, either as mushrooms or as molds. Fungi perform an essential role in the decomposition of organic matter and have fundamental roles in nutrient cycling and exchange in the environment. They have long been used as a direct source of human food, in the form of mushrooms and truffles; as a leavening agent for bread; and in the fermentation of various food products, such as wine, beer, and soy sauce. Since the 1940s, fungi have been used for the production of antibiotics, and, more recently, various enzymes produced by fungi are used industrially and in detergents. Fungi are also used as biological pesticides to control weeds, plant diseases, and insect pests. Many species produce bioactive compounds called mycotoxins, such as alkaloids and polyketides, that are toxic to animals, including humans. The fruiting structures of a few species contain psychotropic compounds and are consumed recreationally or in traditional spiritual ceremonies. Fungi can break down manufactured materials and buildings, and become significant pathogens of humans and other animals. Losses of crops due to fungal diseases (e.g., rice blast disease) or food spoilage can have a large impact on human food supplies and local economies.

The fungus kingdom encompasses an enormous diversity of taxa with varied ecologies, life cycle strategies, and morphologies ranging from unicellular aquatic chytrids to large mushrooms. However, little is known of the true biodiversity of the fungus kingdom, which has been estimated at 2.2 million to 3.8 million species.[6] Of these, only about 148,000 have been described,[7] with over 8,000 species known to be detrimental to plants and at least 300 that can be pathogenic to humans.[8] Ever since the pioneering 18th and 19th century taxonomical works of Carl Linnaeus, Christiaan Hendrik Persoon, and Elias Magnus Fries, fungi have been classified according to their morphology (e.g., characteristics such as spore color or microscopic features) or physiology. Advances in molecular genetics have opened the way for DNA analysis to be incorporated into taxonomy, which has sometimes challenged the historical groupings based on morphology and other traits. Phylogenetic studies published in the first decade of the 21st century have helped reshape the classification within the fungi kingdom, which is divided into one subkingdom, seven phyla, and ten subphyla.

Etymology

The English word fungus is directly adopted from the Latin fungus (mushroom), used in the writings of Horace and Pliny.[9] This in turn is derived from the Greek word sphongos (σφόγγος 'sponge'), which refers to the macroscopic structures and morphology of mushrooms and molds;[10] the root is also used in other languages, such as the German Schwamm ('sponge') and Schimmel ('mold').[11]

The word mycology is derived from the Greek mykes (μύκης 'mushroom') and logos (λόγος 'discourse').[12] It denotes the scientific study of fungi. The Latin adjectival form of "mycology" (mycologicæ) appeared as early as 1796 in a book on the subject by Christiaan Hendrik Persoon.[13] The word appeared in English as early as 1824 in a book by Robert Kaye Greville.[14] In 1836 the English naturalist Miles Joseph Berkeley's publication The English Flora of Sir James Edward Smith, Vol. 5. also refers to mycology as the study of fungi.[10][15]

A group of all the fungi present in a particular region is known as mycobiota (plural noun, no singular).[16] The term mycota is often used for this purpose, but many authors use it as a synonym of Fungi. The word funga has been proposed as a less ambiguous term morphologically similar to fauna and flora.[17] The Species Survival Commission (SSC) of the International Union for Conservation of Nature (IUCN) in August 2021 asked that the phrase fauna and flora be replaced by fauna, flora, and funga.[18]

Characteristics

Fungal hyphae cells
Fungal cell cycle showing dikaryons typical of higher fungi

Before the introduction of molecular methods for phylogenetic analysis, taxonomists considered fungi to be members of the plant kingdom because of similarities in lifestyle: both fungi and plants are mainly immobile, and have similarities in general morphology and growth habitat. Although inaccurate, the common misconception that fungi are plants persists among the general public due to their historical classification, as well as several similarities.[19][20] Like plants, fungi often grow in soil and, in the case of mushrooms, form conspicuous fruit bodies, which sometimes resemble plants such as mosses. The fungi are now considered a separate kingdom, distinct from both plants and animals, from which they appear to have diverged around one billion years ago (around the start of the Neoproterozoic Era).[21][22] Some morphological, biochemical, and genetic features are shared with other organisms, while others are unique to the fungi, clearly separating them from the other kingdoms:

Shared features:

Unique features:

  • Some species grow as unicellular yeasts that reproduce by budding or fission. Dimorphic fungi can switch between a yeast phase and a hyphal phase in response to environmental conditions.[33]
  • The fungal cell wall is made of a chitin-glucan complex; while glucans are also found in plants and chitin in the exoskeleton of arthropods,[35] fungi are the only organisms that combine these two structural molecules in their cell wall. Unlike those of plants and oomycetes, fungal cell walls do not contain cellulose.[36][37]
A whitish fan or funnel-shaped mushroom growing at the base of a tree.
Omphalotus nidiformis, a bioluminescent mushroom

Most fungi lack an efficient system for the long-distance transport of water and nutrients, such as the xylem and phloem in many plants. To overcome this limitation, some fungi, such as Armillaria, form rhizomorphs,[38] which resemble and perform functions similar to the roots of plants. As eukaryotes, fungi possess a biosynthetic pathway for producing terpenes that uses mevalonic acid and pyrophosphate as chemical building blocks.[39] Plants and some other organisms have an additional terpene biosynthesis pathway in their chloroplasts, a structure that fungi and animals do not have.[40] Fungi produce several secondary metabolites that are similar or identical in structure to those made by plants.[39] Many of the plant and fungal enzymes that make these compounds differ from each other in sequence and other characteristics, which indicates separate origins and convergent evolution of these enzymes in the fungi and plants.[39][41]

Diversity

Bracket fungi on a tree stump

Fungi have a worldwide distribution, and grow in a wide range of habitats, including extreme environments such as deserts or areas with high salt concentrations[42] or ionizing radiation,[43] as well as in deep sea sediments.[44] Some can survive the intense UV and cosmic radiation encountered during space travel.[45] Most grow in terrestrial environments, though several species live partly or solely in aquatic habitats, such as the chytrid fungi Batrachochytrium dendrobatidis and B. salamandrivorans, parasites that have been responsible for a worldwide decline in amphibian populations. These organisms spend part of their life cycle as a motile zoospore, enabling them to propel themselves through water and enter their amphibian host.[46] Other examples of aquatic fungi include those living in hydrothermal areas of the ocean.[47]

Widespread white fungus in wood chip mulch in an Oklahoma garden[48]

As of 2020, around 148,000 species of fungi have been described by taxonomists,[7] but the global biodiversity of the fungus kingdom is not fully understood.[49] A 2017 estimate suggests there may be between 2.2 and 3.8 million species.[6] The number of new fungi species discovered yearly has increased from 1,000 to 1,500 per year about 10 years ago, to about 2,000 with a peak of more than 2,500 species in 2016. In the year 2019, 1,882 new species of fungi were described, and it was estimated that more than 90% of fungi remain unknown.[7] The following year, 2,905 new species were described—the highest annual record of new fungus names.[50] In mycology, species have historically been distinguished by a variety of methods and concepts. Classification based on morphological characteristics, such as the size and shape of spores or fruiting structures, has traditionally dominated fungal taxonomy.[51] Species may also be distinguished by their biochemical and physiological characteristics, such as their ability to metabolize certain biochemicals, or their reaction to chemical tests. The biological species concept discriminates species based on their ability to mate. The application of molecular tools, such as DNA sequencing and phylogenetic analysis, to study diversity has greatly enhanced the resolution and added robustness to estimates of genetic diversity within various taxonomic groups.[52]

Mycology

In 1729, Pier Antonio Micheli first published descriptions of fungi.

Mycology is the branch of biology concerned with the systematic study of fungi, including their genetic and biochemical properties, their taxonomy, and their use to humans as a source of medicine, food, and psychotropic substances consumed for religious purposes, as well as their dangers, such as poisoning or infection. The field of phytopathology, the study of plant diseases, is closely related because many plant pathogens are fungi.[53]

The use of fungi by humans dates back to prehistory; Ötzi the Iceman, a well-preserved mummy of a 5,300-year-old Neolithic man found frozen in the Austrian Alps, carried two species of polypore mushrooms that may have been used as tinder (Fomes fomentarius), or for medicinal purposes (Piptoporus betulinus).[54] Ancient peoples have used fungi as food sources—often unknowingly—for millennia, in the preparation of leavened bread and fermented juices. Some of the oldest written records contain references to the destruction of crops that were probably caused by pathogenic fungi.[55]

History

Mycology became a systematic science after the development of the microscope in the 17th century. Although fungal spores were first observed by Giambattista della Porta in 1588, the seminal work in the development of mycology is considered to be the publication of Pier Antonio Micheli's 1729 work Nova plantarum genera.[56] Micheli not only observed spores but also showed that, under the proper conditions, they could be induced into growing into the same species of fungi from which they originated.[57] Extending the use of the binomial system of nomenclature introduced by Carl Linnaeus in his Species plantarum (1753), the Dutch Christiaan Hendrik Persoon (1761–1836) established the first classification of mushrooms with such skill as to be considered a founder of modern mycology. Later, Elias Magnus Fries (1794–1878) further elaborated the classification of fungi, using spore color and microscopic characteristics, methods still used by taxonomists today. Other notable early contributors to mycology in the 17th–19th and early 20th centuries include Miles Joseph Berkeley, August Carl Joseph Corda, Anton de Bary, the brothers Louis René and Charles Tulasne, Arthur H. R. Buller, Curtis G. Lloyd, and Pier Andrea Saccardo. In the 20th and 21st centuries, advances in biochemistry, genetics, molecular biology, biotechnology, DNA sequencing and phylogenetic analysis has provided new insights into fungal relationships and biodiversity, and has challenged traditional morphology-based groupings in fungal taxonomy.[58]

Morphology

Microscopic structures

Monochrome micrograph showing Penicillium hyphae as long, transparent, tube-like structures a few micrometres across. Conidiophores branch out laterally from the hyphae, terminating in bundles of phialides on which spherical condidiophores are arranged like beads on a string. Septa are faintly visible as dark lines crossing the hyphae.
An environmental isolate of Penicillium

Most fungi grow as hyphae, which are cylindrical, thread-like structures 2–10 μm in diameter and up to several centimeters in length. Hyphae grow at their tips (apices); new hyphae are typically formed by emergence of new tips along existing hyphae by a process called branching, or occasionally growing hyphal tips fork, giving rise to two parallel-growing hyphae.[59] Hyphae also sometimes fuse when they come into contact, a process called hyphal fusion (or anastomosis). These growth processes lead to the development of a mycelium, an interconnected network of hyphae.[33] Hyphae can be either septate or coenocytic. Septate hyphae are divided into compartments separated by cross walls (internal cell walls, called septa, that are formed at right angles to the cell wall giving the hypha its shape), with each compartment containing one or more nuclei; coenocytic hyphae are not compartmentalized.[60] Septa have pores that allow cytoplasm, organelles, and sometimes nuclei to pass through; an example is the dolipore septum in fungi of the phylum Basidiomycota.[61] Coenocytic hyphae are in essence multinucleate supercells.[62]

Many species have developed specialized hyphal structures for nutrient uptake from living hosts; examples include haustoria in plant-parasitic species of most fungal phyla,[63] and arbuscules of several mycorrhizal fungi, which penetrate into the host cells to consume nutrients.[64]

Although fungi are opisthokonts—a grouping of evolutionarily related organisms broadly characterized by a single posterior flagellum—all phyla except for the chytrids have lost their posterior flagella.[65] Fungi are unusual among the eukaryotes in having a cell wall that, in addition to glucans (e.g., β-1,3-glucan) and other typical components, also contains the biopolymer chitin.[37]

Macroscopic structures

A cluster of large, thick-stem, light-brown gilled mushrooms growing at the base of a tree
Armillaria solidipes

Fungal mycelia can become visible to the naked eye, for example, on various surfaces and substrates, such as damp walls and spoiled food, where they are commonly called molds. Mycelia grown on solid agar media in laboratory petri dishes are usually referred to as colonies. These colonies can exhibit growth shapes and colors (due to spores or pigmentation) that can be used as diagnostic features in the identification of species or groups.[66] Some individual fungal colonies can reach extraordinary dimensions and ages as in the case of a clonal colony of Armillaria solidipes, which extends over an area of more than 900 ha (3.5 square miles), with an estimated age of nearly 9,000 years.[67]

The apothecium—a specialized structure important in sexual reproduction in the ascomycetes—is a cup-shaped fruit body that is often macroscopic and holds the hymenium, a layer of tissue containing the spore-bearing cells.[68] The fruit bodies of the basidiomycetes (basidiocarps) and some ascomycetes can sometimes grow very large, and many are well known as mushrooms.

Growth and physiology

Time-lapse photography sequence of a peach becoming progressively discolored and disfigured
Mold growth covering a decaying peach. The frames were taken approximately 12 hours apart over a period of six days.

The growth of fungi as hyphae on or in solid substrates or as single cells in aquatic environments is adapted for the efficient extraction of nutrients, because these growth forms have high surface area to volume ratios.[69] Hyphae are specifically adapted for growth on solid surfaces, and to invade substrates and tissues.[70] They can exert large penetrative mechanical forces; for example, many plant pathogens, including Magnaporthe grisea, form a structure called an appressorium that evolved to puncture plant tissues.[71] The pressure generated by the appressorium, directed against the plant epidermis, can exceed 8 megapascals (1,200 psi).[71] The filamentous fungus Paecilomyces lilacinus uses a similar structure to penetrate the eggs of nematodes.[72]

The mechanical pressure exerted by the appressorium is generated from physiological processes that increase intracellular turgor by producing osmolytes such as glycerol.[73] Adaptations such as these are complemented by hydrolytic enzymes secreted into the environment to digest large organic molecules—such as polysaccharides, proteins, and lipids—into smaller molecules that may then be absorbed as nutrients.[74][75][76] The vast majority of filamentous fungi grow in a polar fashion (extending in one direction) by elongation at the tip (apex) of the hypha.[77] Other forms of fungal growth include intercalary extension (longitudinal expansion of hyphal compartments that are below the apex) as in the case of some endophytic fungi,[78] or growth by volume expansion during the development of mushroom stipes and other large organs.[79] Growth of fungi as multicellular structures consisting of somatic and reproductive cells—a feature independently evolved in animals and plants[80]—has several functions, including the development of fruit bodies for dissemination of sexual spores (see above) and biofilms for substrate colonization and intercellular communication.[81]

Fungi are traditionally considered heterotrophs, organisms that rely solely on carbon fixed by other organisms for metabolism. Fungi have evolved a high degree of metabolic versatility that allows them to use a diverse range of organic substrates for growth, including simple compounds such as nitrate, ammonia, acetate, or ethanol.[82][83] In some species the pigment melanin may play a role in extracting energy from ionizing radiation, such as gamma radiation. This form of "radiotrophic" growth has been described for only a few species, the effects on growth rates are small, and the underlying biophysical and biochemical processes are not well known.[43] This process might bear similarity to CO2 fixation via visible light, but instead uses ionizing radiation as a source of energy.[84]

Reproduction

Two thickly stemmed brownish mushrooms with scales on the upper surface, growing out of a tree trunk
Polyporus squamosus

Fungal reproduction is complex, reflecting the differences in lifestyles and genetic makeup within this diverse kingdom of organisms.[85] It is estimated that a third of all fungi reproduce using more than one method of propagation; for example, reproduction may occur in two well-differentiated stages within the life cycle of a species, the teleomorph (sexual reproduction) and the anamorph (asexual reproduction).[86] Environmental conditions trigger genetically determined developmental states that lead to the creation of specialized structures for sexual or asexual reproduction. These structures aid reproduction by efficiently dispersing spores or spore-containing propagules.

Asexual reproduction

Asexual reproduction occurs via vegetative spores (conidia) or through mycelial fragmentation. Mycelial fragmentation occurs when a fungal mycelium separates into pieces, and each component grows into a separate mycelium. Mycelial fragmentation and vegetative spores maintain clonal populations adapted to a specific niche, and allow more rapid dispersal than sexual reproduction.[87] The "Fungi imperfecti" (fungi lacking the perfect or sexual stage) or Deuteromycota comprise all the species that lack an observable sexual cycle.[88] Deuteromycota (alternatively known as Deuteromycetes, conidial fungi, or mitosporic fungi) is not an accepted taxonomic clade and is now taken to mean simply fungi that lack a known sexual stage.[89]

Sexual reproduction

Sexual reproduction with meiosis has been directly observed in all fungal phyla except Glomeromycota[90] (genetic analysis suggests meiosis in Glomeromycota as well). It differs in many aspects from sexual reproduction in animals or plants. Differences also exist between fungal groups and can be used to discriminate species by morphological differences in sexual structures and reproductive strategies.[91][92] Mating experiments between fungal isolates may identify species on the basis of biological species concepts.[92] The major fungal groupings have initially been delineated based on the morphology of their sexual structures and spores; for example, the spore-containing structures, asci and basidia, can be used in the identification of ascomycetes and basidiomycetes, respectively. Fungi employ two mating systems: heterothallic species allow mating only between individuals of the opposite mating type, whereas homothallic species can mate, and sexually reproduce, with any other individual or itself.[93]

Most fungi have both a haploid and a diploid stage in their life cycles. In sexually reproducing fungi, compatible individuals may combine by fusing their hyphae together into an interconnected network; this process, anastomosis, is required for the initiation of the sexual cycle. Many ascomycetes and basidiomycetes go through a dikaryotic stage, in which the nuclei inherited from the two parents do not combine immediately after cell fusion, but remain separate in the hyphal cells (see heterokaryosis).[94]

Microscopic view of numerous translucent or transparent elongated sac-like structures each containing eight spheres lined up in a row
The 8-spore asci of Morchella elata, viewed with phase contrast microscopy

In ascomycetes, dikaryotic hyphae of the hymenium (the spore-bearing tissue layer) form a characteristic hook (crozier) at the hyphal septum. During cell division, the formation of the hook ensures proper distribution of the newly divided nuclei into the apical and basal hyphal compartments. An ascus (plural asci) is then formed, in which karyogamy (nuclear fusion) occurs. Asci are embedded in an ascocarp, or fruiting body. Karyogamy in the asci is followed immediately by meiosis and the production of ascospores. After dispersal, the ascospores may germinate and form a new haploid mycelium.[95]

Sexual reproduction in basidiomycetes is similar to that of the ascomycetes. Compatible haploid hyphae fuse to produce a dikaryotic mycelium. However, the dikaryotic phase is more extensive in the basidiomycetes, often also present in the vegetatively growing mycelium. A specialized anatomical structure, called a clamp connection, is formed at each hyphal septum. As with the structurally similar hook in the ascomycetes, the clamp connection in the basidiomycetes is required for controlled transfer of nuclei during cell division, to maintain the dikaryotic stage with two genetically different nuclei in each hyphal compartment.[96] A basidiocarp is formed in which club-like structures known as basidia generate haploid basidiospores after karyogamy and meiosis.[97] The most commonly known basidiocarps are mushrooms, but they may also take other forms (see Morphology section).

In fungi formerly classified as Zygomycota, haploid hyphae of two individuals fuse, forming a gametangium, a specialized cell structure that becomes a fertile gamete-producing cell. The gametangium develops into a zygospore, a thick-walled spore formed by the union of gametes. When the zygospore germinates, it undergoes meiosis, generating new haploid hyphae, which may then form asexual sporangiospores. These sporangiospores allow the fungus to rapidly disperse and germinate into new genetically identical haploid fungal mycelia.[98]

Spore dispersal

The spores of most of the researched species of fungi are transported by wind.[99][100] Such species often produce dry or hydrophobic spores that do not absorb water and are readily scattered by raindrops, for example.[99][101][102] In other species, both asexual and sexual spores or sporangiospores are often actively dispersed by forcible ejection from their reproductive structures. This ejection ensures exit of the spores from the reproductive structures as well as traveling through the air over long distances.

A brown, cup-shaped fungus with several greyish disc-shaped structures lying within
The bird's nest fungus Cyathus stercoreus

Specialized mechanical and physiological mechanisms, as well as spore surface structures (such as hydrophobins), enable efficient spore ejection.[103] For example, the structure of the spore-bearing cells in some ascomycete species is such that the buildup of substances affecting cell volume and fluid balance enables the explosive discharge of spores into the air.[104] The forcible discharge of single spores termed ballistospores involves formation of a small drop of water (Buller's drop), which upon contact with the spore leads to its projectile release with an initial acceleration of more than 10,000 g;[105] the net result is that the spore is ejected 0.01–0.02 cm, sufficient distance for it to fall through the gills or pores into the air below.[106] Other fungi, like the puffballs, rely on alternative mechanisms for spore release, such as external mechanical forces. The hydnoid fungi (tooth fungi) produce spores on pendant, tooth-like or spine-like projections.[107] The bird's nest fungi use the force of falling water drops to liberate the spores from cup-shaped fruiting bodies.[108] Another strategy is seen in the stinkhorns, a group of fungi with lively colors and putrid odor that attract insects to disperse their spores.[109]

Homothallism

In homothallic sexual reproduction, two haploid nuclei derived from the same individual fuse to form a zygote that can then undergo meiosis. Homothallic fungi include species with an Aspergillus-like asexual stage (anamorphs) occurring in numerous different genera,[110] several species of the ascomycete genus Cochliobolus,[111] and the ascomycete Pneumocystis jirovecii.[112] The earliest mode of sexual reproduction among eukaryotes was likely homothallism, that is, self-fertile unisexual reproduction.[113]

Other sexual processes

Besides regular sexual reproduction with meiosis, certain fungi, such as those in the genera Penicillium and Aspergillus, may exchange genetic material via parasexual processes, initiated by anastomosis between hyphae and plasmogamy of fungal cells.[114] The frequency and relative importance of parasexual events is unclear and may be lower than other sexual processes. It is known to play a role in intraspecific hybridization[115] and is likely required for hybridization between species, which has been associated with major events in fungal evolution.[116]

Evolution

In contrast to plants and animals, the early fossil record of the fungi is meager. Factors that likely contribute to the under-representation of fungal species among fossils include the nature of fungal fruiting bodies, which are soft, fleshy, and easily degradable tissues, and the microscopic dimensions of most fungal structures, which therefore are not readily evident. Fungal fossils are difficult to distinguish from those of other microbes, and are most easily identified when they resemble extant fungi.[117] Often recovered from a permineralized plant or animal host, these samples are typically studied by making thin-section preparations that can be examined with light microscopy or transmission electron microscopy.[118] Researchers study compression fossils by dissolving the surrounding matrix with acid and then using light or scanning electron microscopy to examine surface details.[119]

Prototaxites milwaukeensis (Penhallow, 1908)—a Middle Devonian fungus from Wisconsin

The earliest fossils possessing features typical of fungi date to the Paleoproterozoic era, some 2,400 million years ago (Ma); these multicellular benthic organisms had filamentous structures capable of anastomosis.[120] Other studies (2009) estimate the arrival of fungal organisms at about 760–1060 Ma on the basis of comparisons of the rate of evolution in closely related groups.[121] The oldest fossilizied mycelium to be identified from its molecular composition is between 715 and 810 million years old.[122] For much of the Paleozoic Era (542–251 Ma), the fungi appear to have been aquatic and consisted of organisms similar to the extant chytrids in having flagellum-bearing spores.[123] The evolutionary adaptation from an aquatic to a terrestrial lifestyle necessitated a diversification of ecological strategies for obtaining nutrients, including parasitism, saprobism, and the development of mutualistic relationships such as mycorrhiza and lichenization.[124] Studies suggest that the ancestral ecological state of the Ascomycota was saprobism, and that independent lichenization events have occurred multiple times.[125]

In May 2019, scientists reported the discovery of a fossilized fungus, named Ourasphaira giraldae, in the Canadian Arctic, that may have grown on land a billion years ago, well before plants were living on land.[126][127][128] Pyritized fungus-like microfossils preserved in the basal Ediacaran Doushantuo Formation (~635 Ma) have been reported in South China.[129] Earlier, it had been presumed that the fungi colonized the land during the Cambrian (542–488.3 Ma), also long before land plants.[130] Fossilized hyphae and spores recovered from the Ordovician of Wisconsin (460 Ma) resemble modern-day Glomerales, and existed at a time when the land flora likely consisted of only non-vascular bryophyte-like plants.[131] Prototaxites, which was probably a fungus or lichen, would have been the tallest organism of the late Silurian and early Devonian. Fungal fossils do not become common and uncontroversial until the early Devonian (416–359.2 Ma), when they occur abundantly in the Rhynie chert, mostly as Zygomycota and Chytridiomycota.[130][132][133] At about this same time, approximately 400 Ma, the Ascomycota and Basidiomycota diverged,[134] and all modern classes of fungi were present by the Late Carboniferous (Pennsylvanian, 318.1–299 Ma).[135]

Lichens formed a component of the early terrestrial ecosystems, and the estimated age of the oldest terrestrial lichen fossil is 415 Ma;[136] this date roughly corresponds to the age of the oldest known sporocarp fossil, a Paleopyrenomycites species found in the Rhynie Chert.[137] The oldest fossil with microscopic features resembling modern-day basidiomycetes is Palaeoancistrus, found permineralized with a fern from the Pennsylvanian.[138] Rare in the fossil record are the Homobasidiomycetes (a taxon roughly equivalent to the mushroom-producing species of the Agaricomycetes). Two amber-preserved specimens provide evidence that the earliest known mushroom-forming fungi (the extinct species Archaeomarasmius leggetti) appeared during the late Cretaceous, 90 Ma.[139][140]

Some time after the Permian–Triassic extinction event (251.4 Ma), a fungal spike (originally thought to be an extraordinary abundance of fungal spores in sediments) formed, suggesting that fungi were the dominant life form at this time, representing nearly 100% of the available fossil record for this period.[141] However, the relative proportion of fungal spores relative to spores formed by algal species is difficult to assess,[142] the spike did not appear worldwide,[143][144] and in many places it did not fall on the Permian–Triassic boundary.[145]

Sixty-five million years ago, immediately after the Cretaceous–Paleogene extinction event that famously killed off most dinosaurs, there was a dramatic increase in evidence of fungi; apparently the death of most plant and animal species led to a huge fungal bloom like "a massive compost heap".[146]

Taxonomy

Although commonly included in botany curricula and textbooks, fungi are more closely related to animals than to plants and are placed with the animals in the monophyletic group of opisthokonts.[147] Analyses using molecular phylogenetics support a monophyletic origin of fungi.[52][148] The taxonomy of fungi is in a state of constant flux, especially due to research based on DNA comparisons. These current phylogenetic analyses often overturn classifications based on older and sometimes less discriminative methods based on morphological features and biological species concepts obtained from experimental matings.[149]

There is no unique generally accepted system at the higher taxonomic levels and there are frequent name changes at every level, from species upwards. Efforts among researchers are now underway to establish and encourage usage of a unified and more consistent nomenclature.[52][150] Until relatively recent (2012) changes to the International Code of Nomenclature for algae, fungi and plants, fungal species could also have multiple scientific names depending on their life cycle and mode (sexual or asexual) of reproduction.[151] Web sites such as Index Fungorum and MycoBank are officially recognized nomenclatural repositories and list current names of fungal species (with cross-references to older synonyms).[152]

The 2007 classification of Kingdom Fungi is the result of a large-scale collaborative research effort involving dozens of mycologists and other scientists working on fungal taxonomy.[52] It recognizes seven phyla, two of which—the Ascomycota and the Basidiomycota—are contained within a branch representing subkingdom Dikarya, the most species rich and familiar group, including all the mushrooms, most food-spoilage molds, most plant pathogenic fungi, and the beer, wine, and bread yeasts. The accompanying cladogram depicts the major fungal taxa and their relationship to opisthokont and unikont organisms, based on the work of Philippe Silar,[153] "The Mycota: A Comprehensive Treatise on Fungi as Experimental Systems for Basic and Applied Research"[154] and Tedersoo et al. 2018.[155] The lengths of the branches are not proportional to evolutionary distances.

Zoosporia
Aphelidiomyceta
Eumycota

Taxonomic groups

Main groups of fungi

The major phyla (sometimes called divisions) of fungi have been classified mainly on the basis of characteristics of their sexual reproductive structures. As of 2019, nine major lineages have been identified: Opisthosporidia, Chytridiomycota, Neocallimastigomycota, Blastocladiomycota, Zoopagomycotina, Mucoromycota, Glomeromycota, Ascomycota and Basidiomycota.[156]

Phylogenetic analysis has demonstrated that the Microsporidia, unicellular parasites of animals and protists, are fairly recent and highly derived endobiotic fungi (living within the tissue of another species).[123] Previously considered to be "primitive" protozoa, they are now thought to be either a basal branch of the Fungi, or a sister group–each other's closest evolutionary relative.[157]

The Chytridiomycota are commonly known as chytrids. These fungi are distributed worldwide. Chytrids and their close relatives Neocallimastigomycota and Blastocladiomycota (below) are the only fungi with active motility, producing zoospores that are capable of active movement through aqueous phases with a single flagellum, leading early taxonomists to classify them as protists. Molecular phylogenies, inferred from rRNA sequences in ribosomes, suggest that the Chytrids are a basal group divergent from the other fungal phyla, consisting of four major clades with suggestive evidence for paraphyly or possibly polyphyly.[158]

The Blastocladiomycota were previously considered a taxonomic clade within the Chytridiomycota. Molecular data and ultrastructural characteristics, however, place the Blastocladiomycota as a sister clade to the Zygomycota, Glomeromycota, and Dikarya (Ascomycota and Basidiomycota). The blastocladiomycetes are saprotrophs, feeding on decomposing organic matter, and they are parasites of all eukaryotic groups. Unlike their close relatives, the chytrids, most of which exhibit zygotic meiosis, the blastocladiomycetes undergo sporic meiosis.[123]

The Neocallimastigomycota were earlier placed in the phylum Chytridiomycota. Members of this small phylum are anaerobic organisms, living in the digestive system of larger herbivorous mammals and in other terrestrial and aquatic environments enriched in cellulose (e.g., domestic waste landfill sites).[159] They lack mitochondria but contain hydrogenosomes of mitochondrial origin. As in the related chrytrids, neocallimastigomycetes form zoospores that are posteriorly uniflagellate or polyflagellate.[52]

Microscopic view of a layer of translucent grayish cells, some containing small dark-color spheres
Arbuscular mycorrhiza seen under microscope. Flax root cortical cells containing paired arbuscules.
Cross-section of a cup-shaped structure showing locations of developing meiotic asci (upper edge of cup, left side, arrows pointing to two gray cells containing four and two small circles), sterile hyphae (upper edge of cup, right side, arrows pointing to white cells with a single small circle in them), and mature asci (upper edge of cup, pointing to two gray cells with eight small circles in them)
Diagram of an apothecium (the typical cup-like reproductive structure of Ascomycetes) showing sterile tissues as well as developing and mature asci.

Members of the Glomeromycota form arbuscular mycorrhizae, a form of mutualist symbiosis wherein fungal hyphae invade plant root cells and both species benefit from the resulting increased supply of nutrients. All known Glomeromycota species reproduce asexually.[90] The symbiotic association between the Glomeromycota and plants is ancient, with evidence dating to 400 million years ago.[160] Formerly part of the Zygomycota (commonly known as 'sugar' and 'pin' molds), the Glomeromycota were elevated to phylum status in 2001 and now replace the older phylum Zygomycota.[161] Fungi that were placed in the Zygomycota are now being reassigned to the Glomeromycota, or the subphyla incertae sedis Mucoromycotina, Kickxellomycotina, the Zoopagomycotina and the Entomophthoromycotina.[52] Some well-known examples of fungi formerly in the Zygomycota include black bread mold (Rhizopus stolonifer), and Pilobolus species, capable of ejecting spores several meters through the air.[162] Medically relevant genera include Mucor, Rhizomucor, and Rhizopus.[163]

The Ascomycota, commonly known as sac fungi or ascomycetes, constitute the largest taxonomic group within the Eumycota.[51] These fungi form meiotic spores called ascospores, which are enclosed in a special sac-like structure called an ascus. This phylum includes morels, a few mushrooms and truffles, unicellular yeasts (e.g., of the genera Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia, and Candida), and many filamentous fungi living as saprotrophs, parasites, and mutualistic symbionts (e.g. lichens). Prominent and important genera of filamentous ascomycetes include Aspergillus, Penicillium, Fusarium, and Claviceps. Many ascomycete species have only been observed undergoing asexual reproduction (called anamorphic species), but analysis of molecular data has often been able to identify their closest teleomorphs in the Ascomycota.[164] Because the products of meiosis are retained within the sac-like ascus, ascomycetes have been used for elucidating principles of genetics and heredity (e.g., Neurospora crassa).[165]

Members of the Basidiomycota, commonly known as the club fungi or basidiomycetes, produce meiospores called basidiospores on club-like stalks called basidia. Most common mushrooms belong to this group, as well as rust and smut fungi, which are major pathogens of grains. Other important basidiomycetes include the maize pathogen Ustilago maydis,[166] human commensal species of the genus Malassezia,[167] and the opportunistic human pathogen, Cryptococcus neoformans.[168]

Fungus-like organisms

Because of similarities in morphology and lifestyle, the slime molds (mycetozoans, plasmodiophorids, acrasids, Fonticula and labyrinthulids, now in Amoebozoa, Rhizaria, Excavata, Opisthokonta and Stramenopiles, respectively), water molds (oomycetes) and hyphochytrids (both Stramenopiles) were formerly classified in the kingdom Fungi, in groups like Mastigomycotina, Gymnomycota and Phycomycetes. The slime molds were studied also as protozoans, leading to an ambiregnal, duplicated taxonomy.[169]

Unlike true fungi, the cell walls of oomycetes contain cellulose and lack chitin. Hyphochytrids have both chitin and cellulose. Slime molds lack a cell wall during the assimilative phase (except labyrinthulids, which have a wall of scales), and take in nutrients by ingestion (phagocytosis, except labyrinthulids) rather than absorption (osmotrophy, as fungi, labyrinthulids, oomycetes and hyphochytrids). Neither water molds nor slime molds are closely related to the true fungi, and, therefore, taxonomists no longer group them in the kingdom Fungi. Nonetheless, studies of the oomycetes and myxomycetes are still often included in mycology textbooks and primary research literature.[170]

The Eccrinales and Amoebidiales are opisthokont protists, previously thought to be zygomycete fungi. Other groups now in Opisthokonta (e.g., Corallochytrium, Ichthyosporea) were also at given time classified as fungi. The genus Blastocystis, now in Stramenopiles, was originally classified as a yeast. Ellobiopsis, now in Alveolata, was considered a chytrid. The bacteria were also included in fungi in some classifications, as the group Schizomycetes.

The Rozellida clade, including the "ex-chytrid" Rozella, is a genetically disparate group known mostly from environmental DNA sequences that is a sister group to fungi.[156] Members of the group that have been isolated lack the chitinous cell wall that is characteristic of fungi. Alternatively, Rozella can be classified as a basal fungal group.[148]

The nucleariids may be the next sister group to the eumycete clade, and as such could be included in an expanded fungal kingdom.[147]Many Actinomycetales (Actinomycetota), a group with many filamentous bacteria, were also long believed to be fungi.[171][172]

Ecology

A pin mold decomposing a peach

Although often inconspicuous, fungi occur in every environment on Earth and play very important roles in most ecosystems. Along with bacteria, fungi are the major decomposers in most terrestrial (and some aquatic) ecosystems, and therefore play a critical role in biogeochemical cycles[173] and in many food webs. As decomposers, they play an essential role in nutrient cycling, especially as saprotrophs and symbionts, degrading organic matter to inorganic molecules, which can then re-enter anabolic metabolic pathways in plants or other organisms.[174][175]

Symbiosis

Many fungi have important symbiotic relationships with organisms from most if not all kingdoms.[176][177][178] These interactions can be mutualistic or antagonistic in nature, or in the case of commensal fungi are of no apparent benefit or detriment to the host.[179][180][181]

With plants

Mycorrhizal symbiosis between plants and fungi is one of the most well-known plant–fungus associations and is of significant importance for plant growth and persistence in many ecosystems; over 90% of all plant species engage in mycorrhizal relationships with fungi and are dependent upon this relationship for survival.[182]

A microscopic view of blue-stained cells, some with dark wavy lines in them
The dark filaments are hyphae of the endophytic fungus Epichloë coenophiala in the intercellular spaces of tall fescue leaf sheath tissue

The mycorrhizal symbiosis is ancient, dating back to at least 400 million years.[160] It often increases the plant's uptake of inorganic compounds, such as nitrate and phosphate from soils having low concentrations of these key plant nutrients.[174][183] The fungal partners may also mediate plant-to-plant transfer of carbohydrates and other nutrients.[184] Such mycorrhizal communities are called "common mycorrhizal networks".[185][186] A special case of mycorrhiza is myco-heterotrophy, whereby the plant parasitizes the fungus, obtaining all of its nutrients from its fungal symbiont.[187] Some fungal species inhabit the tissues inside roots, stems, and leaves, in which case they are called endophytes.[188] Similar to mycorrhiza, endophytic colonization by fungi may benefit both symbionts; for example, endophytes of grasses impart to their host increased resistance to herbivores and other environmental stresses and receive food and shelter from the plant in return.[189]

With algae and cyanobacteria

A green, leaf-like structure attached to a tree, with a pattern of ridges and depression on the bottom surface
The lichen Lobaria pulmonaria, a symbiosis of fungal, algal, and cyanobacterial species

Lichens are a symbiotic relationship between fungi and photosynthetic algae or cyanobacteria. The photosynthetic partner in the relationship is referred to in lichen terminology as a "photobiont". The fungal part of the relationship is composed mostly of various species of ascomycetes and a few basidiomycetes.[190] Lichens occur in every ecosystem on all continents, play a key role in soil formation and the initiation of biological succession,[191] and are prominent in some extreme environments, including polar, alpine, and semiarid desert regions.[192] They are able to grow on inhospitable surfaces, including bare soil, rocks, tree bark, wood, shells, barnacles and leaves.[193] As in mycorrhizas, the photobiont provides sugars and other carbohydrates via photosynthesis to the fungus, while the fungus provides minerals and water to the photobiont. The functions of both symbiotic organisms are so closely intertwined that they function almost as a single organism; in most cases the resulting organism differs greatly from the individual components.[194] Lichenization is a common mode of nutrition for fungi; around 27% of known fungi—more than 19,400 species—are lichenized.[195] Characteristics common to most lichens include obtaining organic carbon by photosynthesis, slow growth, small size, long life, long-lasting (seasonal) vegetative reproductive structures, mineral nutrition obtained largely from airborne sources, and greater tolerance of desiccation than most other photosynthetic organisms in the same habitat.[196]

With insects

Many insects also engage in mutualistic relationships with fungi. Several groups of ants cultivate fungi in the order Chaetothyriales for several purposes: as a food source, as a structural component of their nests, and as a part of an ant/plant symbiosis in the domatia (tiny chambers in plants that house arthropods).[197] Ambrosia beetles cultivate various species of fungi in the bark of trees that they infest.[198] Likewise, females of several wood wasp species (genus Sirex) inject their eggs together with spores of the wood-rotting fungus Amylostereum areolatum into the sapwood of pine trees; the growth of the fungus provides ideal nutritional conditions for the development of the wasp larvae.[199] At least one species of stingless bee has a relationship with a fungus in the genus Monascus, where the larvae consume and depend on fungus transferred from old to new nests.[200] Termites on the African savannah are also known to cultivate fungi,[176] and yeasts of the genera Candida and Lachancea inhabit the gut of a wide range of insects, including neuropterans, beetles, and cockroaches; it is not known whether these fungi benefit their hosts.[201] Fungi growing in dead wood are essential for xylophagous insects (e.g. woodboring beetles).[202][203][204] They deliver nutrients needed by xylophages to nutritionally scarce dead wood.[205][203][204] Thanks to this nutritional enrichment the larvae of the woodboring insect is able to grow and develop to adulthood.[202] The larvae of many families of fungicolous flies, particularly those within the superfamily Sciaroidea such as the Mycetophilidae and some Keroplatidae feed on fungal fruiting bodies and sterile mycorrhizae.[206]

As pathogens and parasites

A thin brown stick positioned horizontally with roughly two dozen clustered orange-red leaves originating from a single point in the middle of the stick. These orange leaves are three to four times larger than the few other green leaves growing out of the stick, and are covered on the lower leaf surface with hundreds of tiny bumps. The background shows the green leaves and branches of neighboring shrubs.
The plant pathogen Puccinia magellanicum (calafate rust) causes the defect known as witch's broom, seen here on a barberry shrub in Chile.
Gram stain of Candida albicans from a vaginal swab from a woman with candidiasis, showing hyphae, and chlamydospores, which are 2–4 μm in diameter.

Many fungi are parasites on plants, animals (including humans), and other fungi. Serious pathogens of many cultivated plants causing extensive damage and losses to agriculture and forestry include the rice blast fungus Magnaporthe oryzae,[207] tree pathogens such as Ophiostoma ulmi and Ophiostoma novo-ulmi causing Dutch elm disease,[208] Cryphonectria parasitica responsible for chestnut blight,[209] and Phymatotrichopsis omnivora causing Texas Root Rot, and plant pathogens in the genera Fusarium, Ustilago, Alternaria, and Cochliobolus.[180] Some carnivorous fungi, like Paecilomyces lilacinus, are predators of nematodes, which they capture using an array of specialized structures such as constricting rings or adhesive nets.[210] Many fungi that are plant pathogens, such as Magnaporthe oryzae, can switch from being biotrophic (parasitic on living plants) to being necrotrophic (feeding on the dead tissues of plants they have killed).[211] This same principle is applied to fungi-feeding parasites, including Asterotremella albida, which feeds on the fruit bodies of other fungi both while they are living and after they are dead.[212]

Some fungi can cause serious diseases in humans, several of which may be fatal if untreated. These include aspergillosis, candidiasis, coccidioidomycosis, cryptococcosis, histoplasmosis, mycetomas, and paracoccidioidomycosis. Furthermore, a person with immunodeficiency is more susceptible to disease by genera such as Aspergillus, Candida, Cryptoccocus,[181][213][214] Histoplasma,[215] and Pneumocystis.[216] Other fungi can attack eyes, nails, hair, and especially skin, the so-called dermatophytic and keratinophilic fungi, and cause local infections such as ringworm and athlete's foot.[217] Fungal spores are also a cause of allergies, and fungi from different taxonomic groups can evoke allergic reactions.[218]

As targets of mycoparasites

Organisms that parasitize fungi are known as mycoparasitic organisms. About 300 species of fungi and fungus-like organisms, belonging to 13 classes and 113 genera, are used as biocontrol agents against plant fungal diseases.[219] Fungi can also act as mycoparasites or antagonists of other fungi, such as Hypomyces chrysospermus, which grows on bolete mushrooms.Fungi can also become the target of infection by mycoviruses.[220][221]

Communication

There appears to be electrical communication between fungi in word-like components according to spiking characteristics.[222]

Possible impact on climate

According to a study published in the academic journal Current Biology, fungi can soak from the atmosphere around 36% of global fossil fuel greenhouse gas emissions.[223][224]

Mycotoxins

(6aR,9R)-N-((2R,5S,10aS,10bS)-5-benzyl-10b-hydroxy-2-methyl-3,6-dioxooctahydro-2H-oxazolo[3,2-a] pyrrolo[2,1-c]pyrazin-2-yl)-7-methyl-4,6,6a,7,8,9-hexahydroindolo[4,3-fg] quinoline-9-carboxamide
Ergotamine, a major mycotoxin produced by Claviceps species, which if ingested can cause gangrene, convulsions, and hallucinations

Many fungi produce biologically active compounds, several of which are toxic to animals or plants and are therefore called mycotoxins. Of particular relevance to humans are mycotoxins produced by molds causing food spoilage, and poisonous mushrooms (see above). Particularly infamous are the lethal amatoxins in some Amanita mushrooms, and ergot alkaloids, which have a long history of causing serious epidemics of ergotism (St Anthony's Fire) in people consuming rye or related cereals contaminated with sclerotia of the ergot fungus, Claviceps purpurea.[225] Other notable mycotoxins include the aflatoxins, which are insidious liver toxins and highly carcinogenic metabolites produced by certain Aspergillus species often growing in or on grains and nuts consumed by humans, ochratoxins, patulin, and trichothecenes (e.g., T-2 mycotoxin) and fumonisins, which have significant impact on human food supplies or animal livestock.[226]

Mycotoxins are secondary metabolites (or natural products), and research has established the existence of biochemical pathways solely for the purpose of producing mycotoxins and other natural products in fungi.[39] Mycotoxins may provide fitness benefits in terms of physiological adaptation, competition with other microbes and fungi, and protection from consumption (fungivory).[227][228] Many fungal secondary metabolites (or derivatives) are used medically, as described under Human use below.

Pathogenic mechanisms

Ustilago maydis is a pathogenic plant fungus that causes smut disease in maize and teosinte. Plants have evolved efficient defense systems against pathogenic microbes such as U. maydis. A rapid defense reaction after pathogen attack is the oxidative burst where the plant produces reactive oxygen species at the site of the attempted invasion. U. maydis can respond to the oxidative burst with an oxidative stress response, regulated by the gene YAP1. The response protects U. maydis from the host defense, and is necessary for the pathogen's virulence.[229] Furthermore, U. maydis has a well-established recombinational DNA repair system which acts during mitosis and meiosis.[230] The system may assist the pathogen in surviving DNA damage arising from the host plant's oxidative defensive response to infection.[231]

Cryptococcus neoformans is an encapsulated yeast that can live in both plants and animals. C. neoformans usually infects the lungs, where it is phagocytosed by alveolar macrophages.[232] Some C. neoformans can survive inside macrophages, which appears to be the basis for latency, disseminated disease, and resistance to antifungal agents. One mechanism by which C. neoformans survives the hostile macrophage environment is by up-regulating the expression of genes involved in the oxidative stress response.[232] Another mechanism involves meiosis. The majority of C. neoformans are mating "type a". Filaments of mating "type a" ordinarily have haploid nuclei, but they can become diploid (perhaps by endoduplication or by stimulated nuclear fusion) to form blastospores. The diploid nuclei of blastospores can undergo meiosis, including recombination, to form haploid basidiospores that can be dispersed.[233] This process is referred to as monokaryotic fruiting. This process requires a gene called DMC1, which is a conserved homologue of genes recA in bacteria and RAD51 in eukaryotes, that mediates homologous chromosome pairing during meiosis and repair of DNA double-strand breaks. Thus, C. neoformans can undergo a meiosis, monokaryotic fruiting, that promotes recombinational repair in the oxidative, DNA damaging environment of the host macrophage, and the repair capability may contribute to its virulence.[231][233]

Human use

Microscopic view of five spherical structures; one of the spheres is considerably smaller than the rest and attached to one of the larger spheres
Saccharomyces cerevisiae cells shown with DIC microscopy

The human use of fungi for food preparation or preservation and other purposes is extensive and has a long history. Mushroom farming and mushroom gathering are large industries in many countries. The study of the historical uses and sociological impact of fungi is known as ethnomycology. Because of the capacity of this group to produce an enormous range of natural products with antimicrobial or other biological activities, many species have long been used or are being developed for industrial production of antibiotics, vitamins, and anti-cancer and cholesterol-lowering drugs. Methods have been developed for genetic engineering of fungi,[234] enabling metabolic engineering of fungal species. For example, genetic modification of yeast species[235]—which are easy to grow at fast rates in large fermentation vessels—has opened up ways of pharmaceutical production that are potentially more efficient than production by the original source organisms.[236] Fungi-based industries are sometimes considered to be a major part of a growing bioeconomy, with applications under research and development including use for textiles, meat substitution and general fungal biotechnology.[237][238][239][240][241]

Therapeutic uses

Modern chemotherapeutics

The mold Penicillium rubens was the source of penicillin G.[242]

Many species produce metabolites that are major sources of pharmacologically active drugs.

Antibiotics

Particularly important are the antibiotics, including the penicillins, a structurally related group of β-lactam antibiotics that are synthesized from small peptides. Although naturally occurring penicillins such as penicillin G (produced by Penicillium chrysogenum) have a relatively narrow spectrum of biological activity, a wide range of other penicillins can be produced by chemical modification of the natural penicillins. Modern penicillins are semisynthetic compounds, obtained initially from fermentation cultures, but then structurally altered for specific desirable properties.[243] Other antibiotics produced by fungi include: ciclosporin, commonly used as an immunosuppressant during transplant surgery; and fusidic acid, used to help control infection from methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteria.[244] Widespread use of antibiotics for the treatment of bacterial diseases, such as tuberculosis, syphilis, leprosy, and others began in the early 20th century and continues to date. In nature, antibiotics of fungal or bacterial origin appear to play a dual role: at high concentrations they act as chemical defense against competition with other microorganisms in species-rich environments, such as the rhizosphere, and at low concentrations as quorum-sensing molecules for intra- or interspecies signaling.[245]

Other

Other drugs produced by fungi include griseofulvin isolated from Penicillium griseofulvum, used to treat fungal infections,[246] and statins (HMG-CoA reductase inhibitors), used to inhibit cholesterol synthesis. Examples of statins found in fungi include mevastatin from Penicillium citrinum and lovastatin from Aspergillus terreus and the oyster mushroom.[247] Psilocybin from fungi is investigated for therapeutic use and appears to cause global increases in brain network integration.[248] Fungi produce compounds that inhibit viruses[249][250] and cancer cells.[251] Specific metabolites, such as polysaccharide-K, ergotamine, and β-lactam antibiotics, are routinely used in clinical medicine. The shiitake mushroom is a source of lentinan, a clinical drug approved for use in cancer treatments in several countries, including Japan.[252][253] In Europe and Japan, polysaccharide-K (brand name Krestin), a chemical derived from Trametes versicolor, is an approved adjuvant for cancer therapy.[254]

Traditional medicine

Upper surface view of a kidney-shaped fungus, brownish-red with a lighter yellow-brown margin, and a somewhat varnished or shiny appearance
Two dried yellow-orange caterpillars, one with a curly grayish fungus growing out of one of its ends. The grayish fungus is roughly equal to or slightly greater in length than the caterpillar, and tapers in thickness to a narrow end.
The fungi Ganoderma lucidum (left) and Ophiocordyceps sinensis (right) are used in traditional medicine practices

Certain mushrooms are used as supposed therapeutics in folk medicine practices, such as traditional Chinese medicine. Mushrooms with a history of such use include Agaricus subrufescens,[251][255] Ganoderma lucidum,[256] and Ophiocordyceps sinensis.[257]

Cultured foods

Baker's yeast or Saccharomyces cerevisiae, a unicellular fungus, is used to make bread and other wheat-based products, such as pizza dough and dumplings.[258] Yeast species of the genus Saccharomyces are also used to produce alcoholic beverages through fermentation.[259] Shoyu koji mold (Aspergillus oryzae) is an essential ingredient in brewing Shoyu (soy sauce) and sake, and the preparation of miso,[260] while Rhizopus species are used for making tempeh.[261] Several of these fungi are domesticated species that were bred or selected according to their capacity to ferment food without producing harmful mycotoxins (see below), which are produced by very closely related Aspergilli.[262] Quorn, a meat substitute, is made from Fusarium venenatum.[263]

In food

A selection of edible mushrooms eaten in Asia

Edible mushrooms include commercially raised and wild-harvested fungi. Agaricus bisporus, sold as button mushrooms when small or Portobello mushrooms when larger, is the most widely cultivated species in the West, used in salads, soups, and many other dishes. Many Asian fungi are commercially grown and have increased in popularity in the West. They are often available fresh in grocery stores and markets, including straw mushrooms (Volvariella volvacea), oyster mushrooms (Pleurotus ostreatus), shiitakes (Lentinula edodes), and enokitake (Flammulina spp.).[264]

A corner of cheese with greenish streaks through it
Stilton cheese veined with Penicillium roqueforti

Many other mushroom species are harvested from the wild for personal consumption or commercial sale. Milk mushrooms, morels, chanterelles, truffles, black trumpets, and porcini mushrooms (Boletus edulis) (also known as king boletes) demand a high price on the market. They are often used in gourmet dishes.[265]

Certain types of cheeses require inoculation of milk curds with fungal species that impart a unique flavor and texture to the cheese. Examples include the blue color in cheeses such as Stilton or Roquefort, which are made by inoculation with Penicillium roqueforti.[266] Molds used in cheese production are non-toxic and are thus safe for human consumption; however, mycotoxins (e.g., aflatoxins, roquefortine C, patulin, or others) may accumulate because of growth of other fungi during cheese ripening or storage.[267]

Poisonous fungi

Two light yellow-green mushrooms with stems and caps, one smaller and still in the ground, the larger one pulled out and laid beside the other to show its bulbous stem with a ring
Amanita phalloides accounts for the majority of fatal mushroom poisonings worldwide. It sometimes lacks the greenish color seen here.

Many mushroom species are poisonous to humans and cause a range of reactions including slight digestive problems, allergic reactions, hallucinations, severe organ failure, and death. Genera with mushrooms containing deadly toxins include Conocybe, Galerina, Lepiota and the most infamous, Amanita.[268] The latter genus includes the destroying angel (A. virosa) and the death cap (A. phalloides), the most common cause of deadly mushroom poisoning.[269] The false morel (Gyromitra esculenta) is occasionally considered a delicacy when cooked, yet can be highly toxic when eaten raw.[270] Tricholoma equestre was considered edible until it was implicated in serious poisonings causing rhabdomyolysis.[271] Fly agaric mushrooms (Amanita muscaria) also cause occasional non-fatal poisonings, mostly as a result of ingestion for its hallucinogenic properties. Historically, fly agaric was used by different peoples in Europe and Asia and its present usage for religious or shamanic purposes is reported from some ethnic groups such as the Koryak people of northeastern Siberia.[272]

As it is difficult to accurately identify a safe mushroom without proper training and knowledge, it is often advised to assume that a wild mushroom is poisonous and not to consume it.[273][274]

Pest control

Two dead grasshoppers with a whitish fuzz growing on them
Grasshoppers killed by Beauveria bassiana

In agriculture, fungi may be useful if they actively compete for nutrients and space with pathogenic microorganisms such as bacteria or other fungi via the competitive exclusion principle,[275] or if they are parasites of these pathogens. For example, certain species eliminate or suppress the growth of harmful plant pathogens, such as insects, mites, weeds, nematodes, and other fungi that cause diseases of important crop plants.[276] This has generated strong interest in practical applications that use these fungi in the biological control of these agricultural pests. Entomopathogenic fungi can be used as biopesticides, as they actively kill insects.[277] Examples that have been used as biological insecticides are Beauveria bassiana, Metarhizium spp., Hirsutella spp., Paecilomyces (Isaria) spp., and Lecanicillium lecanii.[278][279] Endophytic fungi of grasses of the genus Epichloë, such as E. coenophiala, produce alkaloids that are toxic to a range of invertebrate and vertebrate herbivores. These alkaloids protect grass plants from herbivory, but several endophyte alkaloids can poison grazing animals, such as cattle and sheep.[280] Infecting cultivars of pasture or forage grasses with Epichloë endophytes is one approach being used in grass breeding programs; the fungal strains are selected for producing only alkaloids that increase resistance to herbivores such as insects, while being non-toxic to livestock.[281][282]

Bioremediation

Certain fungi, in particular white-rot fungi, can degrade insecticides, herbicides, pentachlorophenol, creosote, coal tars, and heavy fuels and turn them into carbon dioxide, water, and basic elements.[283] Fungi have been shown to biomineralize uranium oxides, suggesting they may have application in the bioremediation of radioactively polluted sites.[284][285][286]

Model organisms

Several pivotal discoveries in biology were made by researchers using fungi as model organisms, that is, fungi that grow and sexually reproduce rapidly in the laboratory. For example, the one gene-one enzyme hypothesis was formulated by scientists using the bread mold Neurospora crassa to test their biochemical theories.[287] Other important model fungi are Aspergillus nidulans and the yeasts Saccharomyces cerevisiae and Schizosaccharomyces pombe, each of which with a long history of use to investigate issues in eukaryotic cell biology and genetics, such as cell cycle regulation, chromatin structure, and gene regulation. Other fungal models have emerged that address specific biological questions relevant to medicine, plant pathology, and industrial uses; examples include Candida albicans, a dimorphic, opportunistic human pathogen,[288] Magnaporthe grisea, a plant pathogen,[289] and Pichia pastoris, a yeast widely used for eukaryotic protein production.[290]

Others

Fungi are used extensively to produce industrial chemicals like citric, gluconic, lactic, and malic acids,[291] and industrial enzymes, such as lipases used in biological detergents,[292] cellulases used in making cellulosic ethanol[293] and stonewashed jeans,[294] and amylases,[295] invertases, proteases and xylanases.[296]

See also

References

Citations

  1. ^ Moore RT (1980). "Taxonomic proposals for the classification of marine yeasts and other yeast-like fungi including the smuts". Botanica Marina. 23 (6): 361–373. doi:10.1515/bot-1980-230605.
  2. ^ /ˈfʌn/ , /ˈfʌŋɡ/ , /ˈfʌŋɡi/ or /ˈfʌni/ . The first two pronunciations are favored more in the US and the others in the UK, however all pronunciations can be heard in any English-speaking country.
  3. ^ "Fungus". Oxford Dictionaries. Archived from the original on 28 July 2012. Retrieved 26 February 2011.
  4. ^ Whittaker R (January 1969). "New concepts of kingdoms or organisms. Evolutionary relations are better represented by new classifications than by the traditional two kingdoms". Science. 163 (3863): 150–60. Bibcode:1969Sci...163..150W. CiteSeerX 10.1.1.403.5430. doi:10.1126/science.163.3863.150. PMID 5762760.
  5. ^ Cavalier-Smith T (1998). "A revised six-kingdom system of life". Biological Reviews. 73 (3): 203–66. doi:10.1111/j.1469-185X.1998.tb00030.x. PMID 9809012. S2CID 6557779.
  6. ^ Jump up to: Jump up to: a b Hawksworth DL, Lücking R (July 2017). "Fungal Diversity Revisited: 2.2 to 3.8 Million Species". Microbiology Spectrum. 5 (4): 79–95. doi:10.1128/microbiolspec.FUNK-0052-2016. ISBN 978-1-55581-957-6. PMID 28752818.
  7. ^ Jump up to: Jump up to: a b c Cheek M, Nic Lughadha E, Kirk P, Lindon H, Carretero J, Looney B, et al. (2020). "New scientific discoveries: Plants and fungi". Plants, People, Planet. 2 (5): 371–388. doi:10.1002/ppp3.10148. hdl:1854/LU-8705210.
  8. ^ "Stop neglecting fungi". Nature Microbiology. 2 (8): 17120. 25 July 2017. doi:10.1038/nmicrobiol.2017.120. PMID 28741610.
  9. ^ Simpson DP (1979). Cassell's Latin Dictionary (5 ed.). London, UK: Cassell Ltd. p. 883. ISBN 978-0-304-52257-6.
  10. ^ Jump up to: Jump up to: a b Ainsworth 1976, p. 2.
  11. ^ Mitzka W, ed. (1960). Etymologisches Wörterbuch der deutschen Sprache [Etymological dictionary of the German language] (in German). Berlin: Walter de Gruyter.
  12. ^ Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, p. 1.
  13. ^ Persoon CH (1796). Observationes Mycologicae: Part 1 (in Latin). Leipzig, (Germany): Peter Philipp Wolf. Archived from the original on 19 December 2013. Retrieved 30 March 2019.
  14. ^ Greville RK (1824). Scottish Cryptogamie Flora: Or Coloured Figures and Descriptions of Cryptogamic Plants, Belonging Chiefly to the Order Fungi. Vol. 2. Edinburgh, Scotland: Maclachland and Stewart. p. 65. From p. 65: "This little plant will probably not prove rare in Great Britain, when mycology shall be more studied."
  15. ^ Smith JE (1836). Hooker WJ, Berkeley MJ (eds.). The English Flora of Sir James Edward Smith. Vol. 5, part II: "Class XXIV. Cryptogamia". London, England: Longman, Rees, Orme, Brown, Green & Longman. p. 7. From p. 7: "This has arisen, I conceive, partly from the practical difficulty of preserving specimens for the herbarium, partly from the absence of any general work, adapted to the immense advances which have of late years been made in the study of Mycology."
  16. ^ "LIAS Glossary". Archived from the original on 11 December 2013. Retrieved 14 August 2013.
  17. ^ Kuhar F, Furci G, Drechsler-Santos ER, Pfister DH (2018). "Delimitation of Funga as a valid term for the diversity of fungal communities: the Fauna, Flora & Funga proposal (FF&F)". IMA Fungus. 9 (2): A71–A74. doi:10.1007/BF03449441. hdl:11336/88035.
  18. ^ "IUCN SSC acceptance of Fauna Flora Funga" (PDF). Fungal Conservation Committee, IUCN SSC. 2021. Archived from the original (PDF) on 11 November 2021. Retrieved 11 November 2021. The IUCN Species Survival Commission calls for the due recognition of fungi as major components of biodiversity in legislation and policy. It fully endorses the Fauna Flora Funga Initiative and asks that the phrases animals and plants and fauna and flora be replaced with animals, fungi, and plants and fauna, flora, and funga.
  19. ^ "Fifth-Grade Elementary School Students' Conceptions and Misconceptions about the Fungus Kingdom". Retrieved 5 October 2022.
  20. ^ "Common Student Ideas about Plants and Animals" (PDF). Retrieved 5 October 2022.
  21. ^ Bruns T (October 2006). "Evolutionary biology: a kingdom revised". Nature. 443 (7113): 758–61. Bibcode:2006Natur.443..758B. doi:10.1038/443758a. PMID 17051197. S2CID 648881.
  22. ^ Baldauf SL, Palmer JD (December 1993). "Animals and fungi are each other's closest relatives: congruent evidence from multiple proteins". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (24): 11558–62. Bibcode:1993PNAS...9011558B. doi:10.1073/pnas.90.24.11558. PMC 48023. PMID 8265589.
  23. ^ Deacon 2005, p. 4.
  24. ^ Jump up to: Jump up to: a b Deacon 2005, pp. 128–129.
  25. ^ Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, pp. 28–33.
  26. ^ Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, pp. 31–32.
  27. ^ Shoji JY, Arioka M, Kitamoto K (2006). "Possible involvement of pleiomorphic vacuolar networks in nutrient recycling in filamentous fungi". Autophagy. 2 (3): 226–7. doi:10.4161/auto.2695. PMID 16874107.
  28. ^ Deacon 2005, p. 58.
  29. ^ Zabriskie TM, Jackson MD (February 2000). "Lysine biosynthesis and metabolism in fungi". Natural Product Reports. 17 (1): 85–97. doi:10.1039/a801345d. PMID 10714900.
  30. ^ Xu H, Andi B, Qian J, West AH, Cook PF (2006). "The alpha-aminoadipate pathway for lysine biosynthesis in fungi". Cell Biochemistry and Biophysics. 46 (1): 43–64. doi:10.1385/CBB:46:1:43. PMID 16943623. S2CID 22370361.
  31. ^ Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, pp. 27–28.
  32. ^ Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, p. 685.
  33. ^ Jump up to: Jump up to: a b c Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, p. 30.
  34. ^ Desjardin DE, Perry BA, Lodge DJ, Stevani CV, Nagasawa E (2010). "Luminescent Mycena: new and noteworthy species". Mycologia. 102 (2): 459–77. doi:10.3852/09-197. PMID 20361513. S2CID 25377671. Archived from the original on 11 November 2018. Retrieved 11 November 2018.
  35. ^ Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, pp. 32–33.
  36. ^ Alexopoulos, Mims & Blackwell 1996, p. 33.
  37. ^ Jump up to: Jump up to: a b Gow NA, Latge JP, Munro CA, Heitman J (2017). "The fungal cell wall: Structure, biosynthesis, and function". Microbiology Spectrum. 5 (3). doi:10.1128/microbiolspec.FUNK-0035-2016. hdl:2164/8941. PMID 28513415. S2CID 5026076.
  38. ^ Михаил Дж. Д., Брюн Дж. Н. (ноябрь 2005 г.). «Пищевое поведение ризоморфных систем Armillaria ». Микологические исследования . 109 (Часть 11): 1195–207. дои : 10.1017/S0953756205003606 . ПМИД   16279413 .
  39. Перейти обратно: Перейти обратно: а б с д Келлер Н.П., Тернер Дж., Беннетт Дж.В. (декабрь 2005 г.). «Вторичный метаболизм грибов – от биохимии к геномике». Обзоры природы. Микробиология . 3 (12): 937–47. дои : 10.1038/nrmicro1286 . ПМИД   16322742 . S2CID   23537608 .
  40. ^ Ву С., Шалк М., Кларк А., Майлз Р.Б., Коутс Р., Чаппелл Дж. (ноябрь 2006 г.). «Перенаправление цитозольных или пластидных предшественников изопреноидов увеличивает выработку терпенов в растениях». Природная биотехнология . 24 (11): 1441–7. дои : 10.1038/nbt1251 . ПМИД   17057703 . S2CID   23358348 .
  41. ^ Тудзинский Б. (март 2005 г.). «Биосинтез гиббереллина у грибов: гены, ферменты, эволюция и влияние на биотехнологию». Прикладная микробиология и биотехнология . 66 (6): 597–611. дои : 10.1007/s00253-004-1805-1 . ПМИД   15578178 . S2CID   11191347 .
  42. ^ Вопотик Т., Вераник П., Джено П., Племенитас А. (июнь 2008 г.). «Митохондриальное опосредование дискриминации осмолитов окружающей среды во время осмоадаптации у чрезвычайно галотолерантных черных дрожжей Hortaea werneckii». Грибковая генетика и биология . 45 (6): 994–1007. дои : 10.1016/j.fgb.2008.01.006 . ПМИД   18343697 .
  43. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Дадачева Е., Брайан Р.А., Хуанг Х., Моадель Т., Швейцер А.Д., Айсен П. и др. (2007). «Ионизирующее излучение изменяет электронные свойства меланина и усиливает рост меланизированных грибов» . ПЛОС ОДИН . 2 (5): е457. Бибкод : 2007PLoSO...2..457D . дои : 10.1371/journal.pone.0000457 . ПМК   1866175 . ПМИД   17520016 .
  44. ^ Рагукумар С., Рагукумар С. (1998). «Баротолерантность грибов, выделенных из глубоководных отложений Индийского океана» . Водная микробная экология . 15 (2): 153–163. дои : 10.3354/ame015153 .
  45. ^ Санчо Л.Г., де ла Торре Р., Хорнек Г., Аскасо С., де Лос Риос А., Пинтадо А. и др. (июнь 2007 г.). «Лишайники выживают в космосе: результаты эксперимента LICHENS 2005 года». Астробиология . 7 (3): 443–54. Бибкод : 2007AsBio...7..443S . дои : 10.1089/ast.2006.0046 . ПМИД   17630840 . S2CID   4121180 .
  46. ^ Фишер MC, Гарнер Т.В. (2020). «Хитридные грибы и глобальное сокращение численности амфибий» . Обзоры природы Микробиология . 18 (6): 332–343. дои : 10.1038/s41579-020-0335-x . hdl : 10044/1/78596 . ПМИД   32099078 . S2CID   211266075 .
  47. ^ Варгас-Гастелум Л., Рикельме М. (2020). «Микобиота морских глубин: что может предложить омика» . Жизнь . 10 (11): 292. Бибкод : 2020Жизнь...10..292В . дои : 10.3390/life10110292 . ПМЦ   7699357 . ПМИД   33228036 .
  48. ^ «Грибки в мульче и компостах» . Массачусетский университет в Амхерсте . 6 марта 2015 года . Проверено 15 декабря 2022 г.
  49. ^ Мюллер Г.М., Шмит Дж.П. (2006). «Грибное биоразнообразие: что мы знаем? Что мы можем предсказать?». Биоразнообразие и сохранение . 16 (1): 1–5. дои : 10.1007/s10531-006-9117-7 . S2CID   23827807 .
  50. ^ Ван К., Цай Л., Яо Ю (2021). «Обзор номенклатурных новинок грибов мира и Китая (2020)» . Наука о биоразнообразии . 29 (8): 1064–1072. дои : 10.17520/biods.2021202 . S2CID   240568551 .
  51. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Кирк и др. 2008 , с. 489.
  52. Перейти обратно: Перейти обратно: а б с д и ж Хиббетт Д.С., Биндер М., Бишофф Дж.Ф., Блэквелл М., Кэннон П.Ф., Эрикссон О.Е. и др. (май 2007 г.). «Филогенетическая классификация грибов более высокого уровня» (PDF) . Микологические исследования . 111 (Часть 5): 509–47. CiteSeerX   10.1.1.626.9582 . дои : 10.1016/j.mycres.2007.03.004 . ПМИД   17572334 . S2CID   4686378 . Архивировано из оригинала (PDF) 26 марта 2009 года . Проверено 8 марта 2007 г.
  53. ^ По оценкам 2001 года, известно около 10 000 грибковых заболеваний. Удар С (2006). «Стратегии заражения растительными паразитическими грибами». В Кук Б.М., Джонс Д.Г., Кэй Б. (ред.). Эпидемиология болезней растений . Берлин, Германия: Шпрингер. п. 117. ИСБН  978-1-4020-4580-6 .
  54. ^ Пейнтнер У, Пёдер Р, Пумпель Т (1998). «Грибки Ледяного человека». Микологические исследования . 102 (10): 1153–1162. дои : 10.1017/S0953756298006546 .
  55. ^ Эйнсворт 1976 , с. 1.
  56. ^ Алексопулос, Мимс и Блэквелл 1996 , стр. 1–2.
  57. ^ Эйнсворт 1976 , с. 18.
  58. ^ Хоксворт Д.Л. (сентябрь 2006 г.). «Микологический ящик Пандоры: молекулярные последовательности и морфология в понимании взаимоотношений грибов и биоразнообразия». Revista Iberoamericana de Micologia . 23 (3): 127–33. дои : 10.1016/S1130-1406(06)70031-6 . ПМИД   17196017 .
  59. ^ Харрис С.Д. (2008). «Ветвление гиф грибов: регуляция, механизмы и сравнение с другими системами ветвления» . Микология . 100 (6): 823–32. дои : 10.3852/08-177 . ПМИД   19202837 . S2CID   2147525 . Архивировано из оригинала 12 апреля 2016 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  60. ^ Дикон 2005 , с. 51.
  61. ^ Дикон 2005 , с. 57.
  62. ^ Чанг С.Т., Майлз П.Г. (2004). Грибы: выращивание, пищевая ценность, лечебное действие и воздействие на окружающую среду . Бока-Ратон, Флорида: CRC Press . ISBN  978-0-8493-1043-0 .
  63. ^ Бозкурт Т.О., Камун С., Леннон-Дюмениль А.М. (2020). «Краткий обзор гаусторического интерфейса растения и патогена» . Журнал клеточной науки . 133 (5). дои : 10.1242/jcs.237958 . ПМК   7075074 . ПМИД   32132107 .
  64. ^ Парниске М (октябрь 2008 г.). «Арбускулярная микориза: мать эндосимбиозов корней растений». Обзоры природы. Микробиология . 6 (10): 763–75. дои : 10.1038/nrmicro1987 . ПМИД   18794914 . S2CID   5432120 .
  65. ^ Стенкамп Э.Т., Райт Дж., Балдауф С.Л. (январь 2006 г.). «Протистанское происхождение животных и грибов» . Молекулярная биология и эволюция . 23 (1): 93–106. дои : 10.1093/molbev/msj011 . ПМИД   16151185 .
  66. ^ Хэнсон 2008 , стр. 127–141.
  67. ^ Фергюсон Б.А., Дрейсбах Т.А., Паркс К.Г., Филип Г.М., Шмитт К.Л. (2003). «Крупномасштабная структура популяции патогенных видов Armillaria в смешанохвойном лесу в Голубых горах на северо-востоке Орегона» . Канадский журнал лесных исследований . 33 (4): 612–623. дои : 10.1139/x03-065 . Архивировано из оригинала 3 июля 2019 года . Проверено 3 июля 2019 г.
  68. ^ Алексопулос, Мимс и Блэквелл 1996 , стр. 204–205.
  69. ^ Мосс СТ (1986). Биология морских грибов . Кембридж, Великобритания: Издательство Кембриджского университета . п. 76. ИСБН  978-0-521-30899-1 .
  70. ^ Пеньяльва М.А., Арст Х.Н. (сентябрь 2002 г.). «Регуляция экспрессии генов рН окружающей среды у мицелиальных грибов и дрожжей» . Обзоры микробиологии и молекулярной биологии . 66 (3): 426–46, оглавление. дои : 10.1128/MMBR.66.3.426-446.2002 . ПМК   120796 . ПМИД   12208998 .
  71. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Ховард Р.Дж., Феррари, Массачусетс, Роуч Д.Х., Money NP (декабрь 1991 г.). «Проникновение грибка в твердые субстраты с применением огромного тургорного давления» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 88 (24): 11281–4. Бибкод : 1991PNAS...8811281H . дои : 10.1073/pnas.88.24.11281 . ПМЦ   53118 . ПМИД   1837147 .
  72. ^ Деньги НП (1998). «Механика инвазивного роста грибов и значение тургора при заражении растений». Молекулярная генетика специфичных для хозяина токсинов при болезнях растений: материалы 3-го Международного симпозиума Тоттори по токсинам, специфичным для хозяина, Дайсен, Тоттори, Япония, 24–29 августа 1997 г. Нидерланды: Kluwer Academic Publishers. стр. 261–271. ISBN  978-0-7923-4981-5 .
  73. ^ Ван З.Ю., Дженкинсон Дж.М., Холкомб Л.Дж., Соанс Д.М., Венео-Фурри С., Бхамбра Г.К. и др. (апрель 2005 г.). «Молекулярная биология генерации тургора апрессория рисовым грибком Magnaporthe grisea ». Труды Биохимического общества . 33 (Часть 2): 384–8. дои : 10.1042/BST0330384 . ПМИД   15787612 . S2CID   7111935 .
  74. ^ Перейра Х.Л., Норонья Э.Ф., Миллер Р.Н., Франко О.Л. (июнь 2007 г.). «Новые открытия в использовании гидролитических ферментов, выделяемых грибами, с биотехнологическим потенциалом» . Письма по прикладной микробиологии . 44 (6): 573–81. дои : 10.1111/j.1472-765X.2007.02151.x . ПМИД   17576216 .
  75. ^ Шаллер М., Борелли С., Кортинг Х.К., Хубе Б. (ноябрь 2005 г.). «Гидролитические ферменты как факторы вирулентности Candida albicans ». Микозы . 48 (6): 365–77. дои : 10.1111/j.1439-0507.2005.01165.x . ПМИД   16262871 . S2CID   1356254 .
  76. ^ Фаррар Дж. Ф. (октябрь 1985 г.). «Углеводный обмен у биотрофных фитопатогенов». Микробиологические науки . 2 (10): 314–7. ПМИД   3939987 .
  77. ^ Фишер Р., Зекерт Н., Такешита Н. (май 2008 г.). «Поляризованный рост грибов - взаимодействие между цитоскелетом, позиционными маркерами и мембранными доменами». Молекулярная микробиология . 68 (4): 813–26. дои : 10.1111/j.1365-2958.2008.06193.x . ПМИД   18399939 . S2CID   205365895 .
  78. ^ Кристенсен М.Дж., Беннетт Р.Дж., Ансари Х.А., Кога Х., Джонсон Р.Д., Брайан Г.Т. и др. (февраль 2008 г.). «Эндофиты эпихлои растут за счет вставочного расширения гиф в удлиняющихся листьях травы». Грибковая генетика и биология . 45 (2): 84–93. дои : 10.1016/j.fgb.2007.07.013 . ПМИД   17919950 .
  79. ^ Деньги НП (октябрь 2002 г.). «Грибные стволовые клетки» . Биоэссе . 24 (10): 949–52. дои : 10.1002/bies.10160 . ПМИД   12325127 .
  80. ^ Вилленсдорфер М. (февраль 2009 г.). «Об эволюции дифференцированной многоклеточности». Эволюция; Международный журнал органической эволюции . 63 (2): 306–23. arXiv : 0801.2610 . дои : 10.1111/j.1558-5646.2008.00541.x . ПМИД   19154376 . S2CID   39155292 .
  81. ^ Дэниелс К.Дж., Шриканта Т., Локхарт С.Р., Пуйоль С., Солл Д.Р. (май 2006 г.). «Непрозрачные клетки сигнализируют лейкоцитам о формировании биопленок у Candida albicans » . Журнал ЭМБО . 25 (10): 2240–52. дои : 10.1038/sj.emboj.7601099 . ПМК   1462973 . ПМИД   16628217 .
  82. ^ Тудзинский Б (2014). «Азотистая регуляция вторичного метаболизма грибов» . Границы микробиологии . 5 : 656. дои : 10.3389/fmicb.2014.00656 . ПМЦ   4246892 . ПМИД   25506342 .
  83. ^ Хайнс М.Дж. (1994). «Регуляторные схемы гена amdS Aspergillus nidulans ». Антони ван Левенгук . 65 (3): 179–82. дои : 10.1007/BF00871944 . ПМИД   7847883 . S2CID   45815733 .
  84. ^ Дадачева Э., Касадевалл А (декабрь 2008 г.). «Ионизирующее излучение: как грибы справляются, адаптируются и эксплуатируют с помощью меланина» . Современное мнение в микробиологии . 11 (6): 525–31. дои : 10.1016/j.mib.2008.09.013 . ПМК   2677413 . ПМИД   18848901 .
  85. ^ Алексопулос, Мимс и Блэквелл 1996 , стр. 48–56.
  86. ^ Кирк и др. 2008 , с. 633.
  87. ^ Хейтман Дж. (сентябрь 2006 г.). «Половое размножение и эволюция микробных возбудителей» . Современная биология . 16 (17): Р711–25. Бибкод : 2006CBio...16.R711H . дои : 10.1016/j.cub.2006.07.064 . ПМИД   16950098 . S2CID   2898102 .
  88. ^ Алькамо И.Е., Поммервиль Дж. (2004). Основы микробиологии Алькамо . Бостон, Массачусетс: Джонс и Бартлетт . п. 590 . ISBN  978-0-7637-0067-6 .
  89. ^ Уллоа, Мигель, Халин, Ричард Т. (2012). Иллюстрированный микологический словарь (2-е изд.). Сент-Пол, Миннесота: Американское фитопатологическое общество . п. 156. ИСБН  978-0-89054-400-6 .
  90. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Редекер Д., Рааб П. (2006). «Филогения glomeromycota (арбускулярные микоризные грибы): последние разработки и новые генные маркеры» . Микология . 98 (6): 885–95. дои : 10.3852/микология.98.6.885 . ПМИД   17486965 . Архивировано из оригинала 23 сентября 2015 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  91. ^ Гуарро Дж., Шигель А.М. (июль 1999 г.). «Развитие систематики грибов» . Обзоры клинической микробиологии . 12 (3): 454–500. дои : 10.1128/CMR.12.3.454 . ПМЦ   100249 . ПМИД   10398676 .
  92. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Тейлор Дж.В., Джейкобсон Д.Дж., Крокен С., Касуга Т., Гейзер Д.М., Хиббетт Д.С. и др. (октябрь 2000 г.). «Филогенетическое распознавание видов и концепции видов грибов». Грибковая генетика и биология . 31 (1): 21–32. дои : 10.1006/fgbi.2000.1228 . ПМИД   11118132 . S2CID   2551424 .
  93. ^ Метценберг Р.Л., Гласс Н.Л. (февраль 1990 г.). «Тип спаривания и стратегии спаривания Neurospora». Биоэссе . 12 (2): 53–9. дои : 10.1002/bies.950120202 . ПМИД   2140508 . S2CID   10818930 .
  94. ^ Дженнингс и Лайсек 1996 , стр. 107–114.
  95. ^ Дикон 2005 , с. 31.
  96. ^ Алексопулос, Мимс и Блэквелл 1996 , стр. 492–493.
  97. ^ Дженнингс и Лайсек 1996 , с. 142.
  98. ^ Дикон 2005 , стр. 21–24.
  99. Перейти обратно: Перейти обратно: а б «Распространение спор у грибов» . ботаника.hawaii.edu . Архивировано из оригинала 17 ноября 2011 года . Проверено 28 декабря 2018 г.
  100. ^ «Рассеивание» . herbarium.usu.edu . Архивировано из оригинала 28 декабря 2018 года . Проверено 28 декабря 2018 г.
  101. ^ Хассетт М.О., Фишер М.В., Money NP (28 октября 2015 г.). «Грибы как создатели дождя: как споры действуют как зародыши капель дождя» . ПЛОС ОДИН . 10 (10): e0140407. Бибкод : 2015PLoSO..1040407H . дои : 10.1371/journal.pone.0140407 . ISSN   1932-6203 . ПМЦ   4624964 . ПМИД   26509436 .
  102. ^ Ким С., Пак Х., Грушевски Х.А., Шмале Д.Г., Юнг С. (12 марта 2019 г.). «Вихревое распространение патогена растений под воздействием дождевых капель» . Труды Национальной академии наук . 116 (11): 4917–4922. Бибкод : 2019PNAS..116.4917K . дои : 10.1073/pnas.1820318116 . ISSN   0027-8424 . ПМК   6421443 . ПМИД   30804195 .
  103. ^ Линдер М.Б., Сильвай Г.Р., Накари-Сетяля Т., Пенттиля М.Э. (ноябрь 2005 г.). «Гидрофобины: белки-амфифилы мицелиальных грибов» . Обзоры микробиологии FEMS . 29 (5): 877–96. дои : 10.1016/j.femsre.2005.01.004 . ПМИД   16219510 .
  104. ^ Тропа F (ноябрь 2007 г.). «Грибные пушки: взрывной выброс спор у Ascomycota» . Письма FEMS по микробиологии . 276 (1): 12–8. дои : 10.1111/j.1574-6968.2007.00900.x . ПМИД   17784861 .
  105. ^ Прингл А., Патек С.Н., Фишер М., Штольце Дж., Money NP (2005). «Захваченный запуск баллистоспоры» . Микология . 97 (4): 866–71. дои : 10.3852/микология.97.4.866 . ПМИД   16457355 . Архивировано из оригинала 12 апреля 2016 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  106. ^ Кирк и др. 2008 , с. 495.
  107. ^ «Стимитировать гидноидные грибы, Партнерство по сохранению биоразнообразия Хэмпшира» (PDF) . Архивировано (PDF) из оригинала 4 марта 2016 года . Проверено 13 ноября 2019 г.
  108. ^ Броди Х.Дж. (1975). Грибы птичьего гнезда . Торонто, Онтарио: Издательство Университета Торонто . п. 80. ИСБН  978-0-8020-5307-7 .
  109. ^ Алексопулос, Мимс и Блэквелл 1996 , стр. 545.
  110. ^ Дайер П.С., О'Горман СМ (январь 2012 г.). «Половое развитие и загадочная сексуальность грибов: идеи видов Aspergillus » . Обзоры микробиологии FEMS . 36 (1): 165–192. дои : 10.1111/j.1574-6976.2011.00308.x . ПМИД   22091779 .
  111. ^ Юн С.Х., Берби М.Л., Йодер О.К., Турджен Б.Г. (1999). «Эволюция самоплодного репродуктивного образа жизни грибов от самобесплодных предков» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 96 (10): 5592–7. Бибкод : 1999PNAS...96.5592Y . дои : 10.1073/pnas.96.10.5592 . ПМК   21905 . ПМИД   10318929 .
  112. ^ Ричард С., Алмейда Jmgcf CO, Лураски А., Нильсен О., Паньи М., Хаузер П.М. (2018). «Функциональный анализ и анализ экспрессии генов MAT Pneumocystis предполагают облигатную сексуальность через первичный гомоталлизм в легких хозяина» . мБио . 9 (1). дои : 10.1128/mBio.02201-17 . ПМК   5821091 . ПМИД   29463658 .
  113. ^ Хейтман Дж (2015). «Эволюция полового размножения: взгляд на царство грибов поддерживает эволюционную эпоху, когда пол предшествовал полам» . Обзоры грибковой биологии . 29 (3–4): 108–117. Бибкод : 2015FunBR..29..108H . дои : 10.1016/j.fbr.2015.08.002 . ПМЦ   4730888 . ПМИД   26834823 .
  114. ^ Дженнингс и Лайсек 1996 , стр. 114–115.
  115. ^ Фурлането MC, Пиццирани-Кляйнер А.А. (январь 1992 г.). «Внутривидовая гибридизация Trichoderma pseudokoningii путем анастомоза и слияния протопластов» . Письма FEMS по микробиологии . 69 (2): 191–5. дои : 10.1111/j.1574-6968.1992.tb05150.x . ПМИД   1537549 .
  116. ^ Шардл CL, Крэйвен К.Д. (ноябрь 2003 г.). «Межвидовая гибридизация растительных грибов и оомицетов: обзор» . Молекулярная экология . 12 (11): 2861–73. Бибкод : 2003MolEc..12.2861S . дои : 10.1046/j.1365-294X.2003.01965.x . ПМИД   14629368 . S2CID   25879264 .
  117. ^ Донохью М.Дж., Кракрафт Дж. (2004). Сборка Древа Жизни . Оксфорд (Оксфордшир), Великобритания: Издательство Оксфордского университета . п. 187. ИСБН  978-0-19-517234-8 .
  118. ^ Тейлор и Тейлор 1993 , с. 19.
  119. ^ Тейлор и Тейлор 1993 , стр. 7–12.
  120. ^ Бенгтсон С., Расмуссен Б., Иварссон М., Мюлинг Дж., Броман С., Мароне Ф. и др. (24 апреля 2017 г.). «Грибоподобные мицелиальные окаменелости в везикулярном базальте возрастом 2,4 миллиарда лет» . Экология и эволюция природы . 1 (6): 0141. Бибкод : 2017NatEE...1..141B . дои : 10.1038/s41559-017-0141 . hdl : 20.500.11937/67718 . ПМИД   28812648 . S2CID   25586788 . Архивировано из оригинала 15 июля 2019 года . Проверено 15 июля 2019 г.
  121. ^ Люкинг Р., Хундорф С., Пфистер Д.Х., Плата Э.Р., Лумбш Х.Т. (2009). «Грибы развивались правильно» . Микология . 101 (6): 810–22. дои : 10.3852/09-016 . ПМИД   19927746 . S2CID   6689439 .
  122. ^ Первые грибы появились раньше, чем считалось ранее.
  123. Перейти обратно: Перейти обратно: а б с Джеймс Т., Кауфф Ф., Шох К.Л., Матени П.Б., Хофстеттер В., Кокс С.Дж. и др. (октябрь 2006 г.). «Реконструкция ранней эволюции грибов с использованием филогении из шести генов». Природа . 443 (7113): 818–22. Бибкод : 2006Natur.443..818J . дои : 10.1038/nature05110 . ПМИД   17051209 . S2CID   4302864 .
  124. ^ Тейлор и Тейлор 1993 , стр. 84–94 и 106–107.
  125. ^ Шох К.Л., Сунг Г.Х., Лопес-Хиральдес Ф., Таунсенд Дж.П., Миадликовска Дж., Хофстеттер В. и др. (апрель 2009 г.). «Древо жизни Ascomycota: филогения всего типа проясняет происхождение и эволюцию фундаментальных репродуктивных и экологических признаков» . Систематическая биология . 58 (2): 224–39. дои : 10.1093/sysbio/syp020 . ПМИД   20525580 .
  126. ^ Циммер С (22 мая 2019 г.). «Как жизнь появилась на суше? Гриб возрастом в миллиард лет может содержать подсказки: тайник микроскопических окаменелостей из Арктики намекает на то, что грибы достигли суши задолго до растений» . Нью-Йорк Таймс . Архивировано из оригинала 23 мая 2019 года . Проверено 23 мая 2019 г.
  127. ^ Лорон CC, Франсуа С., Рейнберд Р.Х., Тернер ЕС, Боренцтайн С., Яво Э.Дж. (22 мая 2019 г.). «Ранние грибы протерозоя в Арктической Канаде». Природа . 570 (7760). Springer Science and Business Media LLC : 232–235. Бибкод : 2019Natur.570..232L . дои : 10.1038/s41586-019-1217-0 . ISSN   0028-0836 . ПМИД   31118507 . S2CID   162180486 .
  128. ^ Тиммер Дж (22 мая 2019 г.). «Окаменелости возрастом в миллиард лет могут быть ранними грибами» . Арс Техника . Архивировано из оригинала 23 мая 2019 года . Проверено 23 мая 2019 г.
  129. ^ Ган Т., Луо Т., Пан К., Чжоу С., Чжоу Г., Ван Б. и др. (28 января 2021 г.). «Загадочные наземные грибоподобные окаменелости раннего эдиакарского периода» . Природные коммуникации . 12 (1): 641. Бибкод : 2021NatCo..12..641G . дои : 10.1038/s41467-021-20975-1 . ISSN   2041-1723 . ПМЦ   7843733 . ПМИД   33510166 .
  130. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Брундретт MC (2002). «Коэволюция корней и микоризы наземных растений» . Новый фитолог . 154 (2): 275–304. дои : 10.1046/j.1469-8137.2002.00397.x . ПМИД   33873429 .
  131. ^ Редекер Д., Коднер Р., Грэм Л.Е. (сентябрь 2000 г.). «Гломалеевые грибы ордовика». Наука . 289 (5486): 1920–1. Бибкод : 2000Sci...289.1920R . дои : 10.1126/science.289.5486.1920 . ПМИД   10988069 . S2CID   43553633 .
  132. ^ Тейлор Т.Н., Тейлор Э.Л. (1996). «Распространение и взаимодействие некоторых палеозойских грибов». Обзор палеоботаники и палинологии . 95 (1–4): 83–94. дои : 10.1016/S0034-6667(96)00029-2 .
  133. ^ Доцлер Н., Уокер С., Крингс М., Хасс Х., Керп Х., Тейлор Т.Н. и др. (2009). « Споры акаулоспороидного гломеромикотана с щитком прорастания из черепа Райни возрастом 400 миллионов лет» (PDF) . Микологический прогресс . 8 (1): 9–18. Бибкод : 2009MycPr...8....9D . дои : 10.1007/s11557-008-0573-1 . hdl : 1808/13680 . S2CID   1746303 .
  134. ^ Тейлор Дж.В., Берби М.Л. (2006). «Дивергенции датировки на грибном древе жизни: обзор и новый анализ» . Микология . 98 (6): 838–49. doi : 10.3852/mycologia.98.6.838 . ПМИД   17486961 . Архивировано из оригинала 12 апреля 2016 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  135. ^ Блэквелл М., Вилгалис Р., Джеймс Тай, Тейлор Дж.В. (2009). «Грибы. Eumycota: грибы, сумчатые грибы, дрожжи, плесень, ржавчина, головня и т. д.» . Веб-проект «Древо жизни». Архивировано из оригинала 13 апреля 2009 года . Проверено 25 апреля 2009 г.
  136. ^ Онеггер Р. , Эдвардс Д., Акс Л. (2013). «Самые ранние записи внутренне стратифицированных цианобактерий и водорослевых лишайников из нижнего девона Уэльского пограничья» . Новый фитолог . 197 (1): 264–275. дои : 10.1111/nph.12009 . ПМИД   23110612 .
  137. ^ Тейлор Т.Н., Хасс Х., Керп Х., Крингс М., Ханлин Р.Т. (2005). «Пертециальные аскомицеты из черепа Рини возрастом 400 миллионов лет: пример наследственного полиморфизма» . Микология . 97 (1): 269–85. дои : 10.3852/микология.97.1.269 . hdl : 1808/16786 . ПМИД   16389979 . Архивировано из оригинала 12 апреля 2016 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  138. ^ Деннис Р.Л. (1970). «Мицелий базидиомицета Средней Пенсильвании с зажимными соединениями» . Микология . 62 (3): 578–584. дои : 10.2307/3757529 . JSTOR   3757529 . Архивировано из оригинала 29 сентября 2018 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  139. ^ Хиббетт Д.С., Гримальди Д., Донохью М.Дж. (1995). «Меловые грибы в янтаре» . Природа . 377 (6549): 487. Бибкод : 1995Natur.377..487H . дои : 10.1038/377487a0 . S2CID   4346359 .
  140. ^ Хиббетт Д.С., Гримальди Д., Донохью М.Дж. (1997). «Ископаемые грибы из миоценовых и меловых янтарей и эволюция гомобазидиомицетов» . Американский журнал ботаники . 84 (7): 981–991. дои : 10.2307/2446289 . JSTOR   2446289 . ПМИД   21708653 . S2CID   22011469 .
  141. ^ Эшет Ю., Рампино М.Р., Вишер Х. (1995). «Грибное событие и палинологическая запись экологического кризиса и восстановления на границе перми и триаса». Геология . 23 (1): 967–970. Бибкод : 1995Geo....23..967E . doi : 10.1130/0091-7613(1995)023<0967:FEAPRO>2.3.CO;2 . S2CID   58937537 .
  142. ^ Фостер CB, Стивенсон М.Х., Маршалл С., Логан Г.А., Гринвуд П.Ф. (2002). «Пересмотр редувиаспоронитов Wilson 1962: описание, иллюстрация, сравнение и биологическое сходство». Палинология . 26 (1): 35–58. Бибкод : 2002Палы...26...35Ф . дои : 10.2113/0260035 .
  143. ^ Лопес-Гомес Дж., Тейлор Э.Л. (2005). «Пермско-триасовый переход в Испании: междисциплинарный подход». Палеогеография, Палеоклиматология, Палеоэкология . 229 (1–2): 1–2. дои : 10.1016/j.palaeo.2005.06.028 .
  144. ^ Лой К.В., Твитчетт Р.Дж., Дилчер Д.Л., Ван Конийненбург-Ван Циттерт Дж.Х., Висшер Х. (июль 2001 г.). «Жизнь в конечно-пермской мертвой зоне» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 98 (14): 7879–83. Бибкод : 2001PNAS...98.7879L . дои : 10.1073/pnas.131218098 . ПМК   35436 . ПМИД   11427710 . См. изображение 2.
  145. ^ Уорд П.Д., Бота Дж., Бьюик Р., Де Кок М.О., Эрвин Д.Х., Гаррисон Г.Х. и др. (февраль 2005 г.). «Внезапное и постепенное вымирание наземных позвоночных поздней перми в бассейне Кару, Южная Африка». Наука . 307 (5710): 709–14. Бибкод : 2005Sci...307..709W . CiteSeerX   10.1.1.503.2065 . дои : 10.1126/science.1107068 . ПМИД   15661973 . S2CID   46198018 .
  146. ^ Касадевалл А., Хейтман Дж. (16 августа 2012 г.). «Грибы и появление млекопитающих» . ПЛОС Патогены . 8 (8): e1002808. дои : 10.1371/journal.ppat.1002808 . ПМК   3420938 . ПМИД   22916007 . Это экологическое бедствие сопровождалось масштабной вырубкой лесов, за которой последовало цветение грибков, поскольку земля превратилась в огромный компост.
  147. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Шалчиан-Тебризи К., Минге М.А., Эспелунд М., Орр Р., Руден Т., Якобсен К.С. и др. (2008). «Мультигенная филогения хоанозоа и происхождение животных» . ПЛОС ОДИН . 3 (5): e2098. Бибкод : 2008PLoSO...3.2098S . дои : 10.1371/journal.pone.0002098 . ПМК   2346548 . ПМИД   18461162 .
  148. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Ли Ю, Стинвик Дж. Л., Чанг Ю, Ван Ю, Джеймс Т., Стажич Дж. Э. и др. (2021). «Геномная филогения царства грибов» . Современная биология . 31 (8): 1653–1665. Бибкод : 2021CBio...31E1653L . дои : 10.1016/j.cub.2021.01.074 . ПМЦ   8347878 . ПМИД   33607033 .
  149. ^ «Палеосные грибы: Грибы» . Архивировано из оригинала 20 июня 2012 г. для введения в таксономию грибов, включая разногласия. архив
  150. ^ Селио Дж.Дж., Падамси М., Дентингер Б.Т., Бауэр Р., Маклафлин DJ (2006). «Сборка грибного древа жизни: построение структурной и биохимической базы данных». Микология . 98 (6): 850–9. дои : 10.3852/микология.98.6.850 . ПМИД   17486962 . S2CID   23123595 .
  151. ^ Россман А.Ю. (2014). «Уроки, извлеченные из перехода к единому научному названию грибов» . ИМА Гриб . 5 (1): 81–89. дои : 10.5598/imafungus.2014.05.01.10 . ПМК   4107901 . ПМИД   25083410 .
  152. ^ Рыжая С., Норвелл Л. (2013). «MycoBank, Index Fungorum и Fungal Names рекомендованы в качестве официальных номенклатурных хранилищ на 2013 год» . ИМА Гриб . 3 (2): 44–45.
  153. ^ Силар П. (2016). Эукариотические протисты: происхождение, эволюция и биология эукариотических микробов . ХЭЛ. п. 462. ИСБН  978-2-9555841-0-1 . Архивировано из оригинала 25 сентября 2017 года . Проверено 7 апреля 2016 г.
  154. ^ Эссер К (2014). Маклафлин DJ, Спатафора JW (ред.). Систематика и эволюция . Спрингер. п. 461. дои : 10.1007/978-3-642-55318-9 . ISBN  978-3-642-55317-2 . S2CID   46141350 .
  155. ^ Тедерсоо Л., Санчес-Рамирес С., Кольялг У., Бахрам М., Доринг М., Шигель Д. и др. (22 февраля 2018 г.). «Классификация грибов высокого уровня и инструмент эволюционного экологического анализа» . Грибное разнообразие . 90 (1): 135–159. дои : 10.1007/s13225-018-0401-0 .
  156. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Наранхо-Ортис М.А., Габальдон Т. (2019). «Эволюция грибов: разнообразие, таксономия и филогения грибов» . Биологические обзоры . 94 (6): 2101–2137. дои : 10.1111/brv.12550 . ПМК   6899921 . ПМИД   31659870 .
  157. ^ Хан Б., Вайс Л.М., Хейтман Дж., Стукенброк Э.Х. (2017). «Микроспоридии: Облигатные внутриклеточные патогены грибного царства» . Микробиологический спектр . 5 (2). doi : 10.1128/microbiolspec.FUNK-0018-2016 . ПМК   5613672 . ПМИД   28944750 .
  158. ^ Джеймс Т., Летчер П.М., Лонгкор Дж.Э., Мозли-Стэндридж С.Э., Портер Д., Пауэлл М.Дж. и др. (2006). «Молекулярная филогения жгутиковых грибов (Chytridiomycota) и описание нового типа (Blastocladiomycota)» . Микология . 98 (6): 860–71. дои : 10.3852/микология.98.6.860 . ПМИД   17486963 . Архивировано из оригинала 23 сентября 2015 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  159. ^ Локхарт Р.Дж., Ван Дайк М.И., Бидл И.Р., Хамфрис П., Маккарти А.Дж. (август 2006 г.). «Молекулярно-биологическое обнаружение анаэробных кишечных грибов (Neocallimastigales) на свалках» . Прикладная и экологическая микробиология . 72 (8): 5659–61. Бибкод : 2006ApEnM..72.5659L . дои : 10.1128/АЕМ.01057-06 . ПМЦ   1538735 . ПМИД   16885325 .
  160. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Реми В., Тейлор Т.Н., Хасс Х., Керп Х. (декабрь 1994 г.). «Везикулярная арбускулярная микориза возрастом четыреста миллионов лет» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 91 (25): 11841–3. Бибкод : 1994PNAS...9111841R . дои : 10.1073/pnas.91.25.11841 . ПМЦ   45331 . ПМИД   11607500 .
  161. ^ Шюсслер А., Шварцотт Д., Уокер С. (2001). «Новый тип грибов Glomeromycota: филогения и эволюция». Микологические исследования . 105 (12): 1413–1421. дои : 10.1017/S0953756201005196 . S2CID   82128210 .
  162. ^ Алексопулос, Мимс и Блэквелл 1996 , стр. 145.
  163. ^ Вальтер Г., Вагнер Л., Курзай О. (2019). «Обновленные данные о таксономии Mucorales с акцентом на клинически важные таксоны» . Журнал грибов . 5 (4): 106. дои : 10.3390/jof5040106 . ПМК   6958464 . ПМИД   31739583 .
  164. ^ Пример см . Сэмюэлс Дж.Дж. (февраль 2006 г.). « Триходерма : систематика, половое состояние и экология» . Фитопатология . 96 (2): 195–206. дои : 10.1094/PHYTO-96-0195 . ПМИД   18943925 .
  165. ^ Арамайо Р., Селькер ЕС (2013). « Neurospora crassa , модельная система для эпигенетических исследований» . Перспективы Колд-Спринг-Харбор в биологии . 5 (10): а017921. doi : 10.1101/cshperspect.a017921 . ПМЦ   3783048 . ПМИД   24086046 .
  166. ^ Оликон-Эрнандес Д.Р., Араиса-Вильянуэва М.Г., Пардо Х.П., Аранда Э., Герра-Санчес Г. (2019). «Новые взгляды на Ustilago maydis как модель дрожжей для генетических и биотехнологических исследований: обзор». Современная микробиология . 76 (8): 917–926. дои : 10.1007/s00284-019-01629-4 . ПМИД   30689003 . S2CID   59307118 .
  167. ^ Рими В., Тилен Б., Бёкхаут Т., Отранто Д., Кафарчия К. (2020). « Дрожжи Malassezia spp., вызывающие новые опасения в отношении грибков» . Границы клеточной и инфекционной микробиологии . 10 : 370. дои : 10.3389/fcimb.2020.00370 . ПМК   7399178 . ПМИД   32850475 .
  168. ^ Perfect JR (июнь 2006 г.). « Cryptococcus neoformans : дрожжи, которые любят погорячее» . Исследование дрожжей FEMS . 6 (4): 463–8. дои : 10.1111/j.1567-1364.2006.00051.x . ПМИД   16696642 .
  169. ^ Леонтьев Д.В., Шниттлер М (2017). «Филогения миксомицетов». В Стивенсоне С.Л., Рохасе С. (ред.). Миксомицеты. Биология, систематика, биогеография и экология . Академическая пресса . стр. 83–106. дои : 10.1016/B978-0-12-805089-7.00003-2 . ISBN  978-0-12-805089-7 .
  170. ^ Блэквелл М., Спатафора Дж.В. (2004). «Грибы и их союзники». В Биллс Г.Ф., Мюллер Г.М., Фостер М.С. (ред.). Биоразнообразие грибов: методы инвентаризации и мониторинга . Амстердам: Elsevier Academic Press . стр. 18–20. ISBN  978-0-12-509551-8 .
  171. ^ Аморосо М.Ю., Бенимели К.С., Куоццо С.А. (2013). Актинобактерии: применение в биоремедиации и производстве промышленных ферментов . CRC Press , Taylor & Francisco Group. п. 33. ISBN  9781466578739 .
  172. ^ «Введение в биологию почвы» . Человечество Орегон .
  173. ^ Гэдд GM (январь 2007 г.). «Геомикология: биогеохимические преобразования горных пород, минералов, металлов и радионуклидов грибами, биовыветривание и биоремедиация». Микологические исследования . 111 (Часть 1): 3–49. дои : 10.1016/j.mycres.2006.12.001 . ПМИД   17307120 .
  174. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Линдаль Б.Д., Ирмарк К., Боберг Дж., Трамбор С.Е. , Хёгберг П., Стенлид Дж. и др. (2007). «Пространственное разделение разложения подстилки и поглощения азота микоризой в бореальном лесу» . Новый фитолог . 173 (3): 611–20. дои : 10.1111/j.1469-8137.2006.01936.x . hdl : 11858/00-001M-0000-0027-D56D-D . ПМИД   17244056 .
  175. ^ Бареа Х.М., Посо М.Дж., Азкон Р., Азкон-Агилар К. (июль 2005 г.). «Микробное сотрудничество в ризосфере» . Журнал экспериментальной ботаники . 56 (417): 1761–78. дои : 10.1093/jxb/eri197 . ПМИД   15911555 .
  176. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Аанен Д.К. (июнь 2006 г.). «Что пожнешь, то и посеешь: сочетание сбора урожая и прививки стабилизирует взаимосвязь между термитами и грибами» . Письма по биологии . 2 (2): 209–12. дои : 10.1098/rsbl.2005.0424 . ПМЦ   1618886 . ПМИД   17148364 .
  177. ^ Нико Н., Фукацу Т. (апрель 2000 г.). «Междуцарствие хозяина, прыгающего под землей: филогенетический анализ энтомопаразитных грибов рода Cordyceps » . Молекулярная биология и эволюция . 17 (4): 629–38. doi : 10.1093/oxfordjournals.molbev.a026341 . ПМИД   10742053 .
  178. ^ Перотто С., Бонфанте П. (декабрь 1997 г.). «Бактериальные ассоциации с микоризными грибами: близкие и дальние друзья в ризосфере». Тенденции в микробиологии . 5 (12): 496–501. дои : 10.1016/S0966-842X(97)01154-2 . ПМИД   9447662 .
  179. ^ Арнольд А.Е., Мехиа Л.С., Килло Д., Рохас Э.И., Мейнард З., Роббинс Н. и др. (декабрь 2003 г.). «Грибковые эндофиты ограничивают повреждение тропического дерева патогенами» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 100 (26): 15649–54. Бибкод : 2003PNAS..10015649A . дои : 10.1073/pnas.2533483100 . ПМК   307622 . ПМИД   14671327 .
  180. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Пашковский У (август 2006 г.). «Мутуализм и паразитизм: инь и янь растительных симбиозов». Современное мнение в области биологии растений . 9 (4): 364–70. Бибкод : 2006COPB....9..364P . дои : 10.1016/j.pbi.2006.05.008 . ПМИД   16713732 .
  181. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Хубе Б. (август 2004 г.). «От комменсала к патогену: стадийная и тканеспецифичная экспрессия генов Candida albicans ». Современное мнение в микробиологии . 7 (4): 336–41. дои : 10.1016/j.mib.2004.06.003 . ПМИД   15288621 .
  182. ^ Бонфанте П. (апрель 2003 г.). «Растения, микоризные грибы и эндобактерии: диалог клеток и геномов» . Биологический вестник . 204 (2): 215–20. дои : 10.2307/1543562 . JSTOR   1543562 . ПМИД   12700157 . S2CID   12377410 .
  183. ^ ван дер Хейден М.Г., Стрейтвольф-Энгель Р., Ридл Р., Зигрист С., Нойдекер А., Инейхен К. и др. (2006). «Вклад микоризы в продуктивность растений, питание растений и структуру почвы на экспериментальных пастбищах» . Новый фитолог . 172 (4): 739–52. дои : 10.1111/j.1469-8137.2006.01862.x . ПМИД   17096799 . S2CID   17048094 .
  184. ^ Хейден М.Г. (15 апреля 2016 г.). «Подземная сеть». Наука . 352 (6283): 290–291. Бибкод : 2016Sci...352..290H . doi : 10.1126/science.aaf4694 . ISSN   0036-8075 . ПМИД   27081054 . S2CID   133399719 .
  185. ^ Селоссе М.А., Ричард Ф., Хе Х, Симард С.В. (ноябрь 2006 г.). «Микоризные сети: опасные связи?». Тенденции в экологии и эволюции . 21 (11): 621–8. дои : 10.1016/j.tree.2006.07.003 . ПМИД   16843567 .
  186. ^ Ён Э (14 апреля 2016 г.). «У деревьев есть свой Интернет» . Атлантика . Архивировано из оригинала 28 марта 2019 года . Проверено 9 марта 2019 г.
  187. ^ Меркс В., Бидартондо М.И., Хинсон Н.А. (декабрь 2009 г.). «Микогетеротрофия: когда грибы-хозяева растений» . Анналы ботаники . 104 (7): 1255–61. дои : 10.1093/aob/mcp235 . ПМЦ   2778383 . ПМИД   19767309 .
  188. ^ Шульц Б., Бойл С. (июнь 2005 г.). «Эндофитный континуум». Микологические исследования . 109 (Часть 6): 661–86. дои : 10.1017/S095375620500273X . ПМИД   16080390 . S2CID   23182632 .
  189. ^ Клей К., Шардл С. (октябрь 2002 г.). «Эволюционное происхождение и экологические последствия симбиоза эндофитов с травами». Американский натуралист . 160 Приложение 4 (дополнение 4): S99–S127. дои : 10.1086/342161 . ПМИД   18707456 . S2CID   23909652 .
  190. ^ Бродо И.М., Шарнов С.Д. (2001). Лишайники Северной Америки . Нью-Хейвен, Коннектикут: Издательство Йельского университета . ISBN  978-0-300-08249-4 .
  191. ^ Рэйвен П.Х., Эверт РФ, Эйххорн, ЮВ (2005). «14 — Грибы» . Биология растений (7-е изд.). У. Х. Фриман. п. 290 . ISBN  978-0-7167-1007-3 .
  192. ^ Дикон 2005 , с. 267.
  193. ^ Первис В. (2000). Лишайники . Вашингтон, округ Колумбия: Издательство Смитсоновского института совместно с Музеем естественной истории, Лондон. стр. 49–75 . ISBN  978-1-56098-879-3 .
  194. ^ Кирк и др. 2008 , с. 378.
  195. ^ Гарридо-Бенавент I, Перес-Ортега С (2017). «Прошлые, настоящие и будущие исследования биполярных лихенообразующих грибов и их фотобионтов» . Американский журнал ботаники . 104 (11): 1660–1674. дои : 10.3732/ajb.1700182 .
  196. ^ Дикон 2005 , стр. 267–276.
  197. ^ Хомицки Г., Реннер СС (2017). «Взаимодействие муравьев с биотической средой» . Труды Королевского общества B: Биологические науки . 284 (1850): 20170013. doi : 10.1098/rspb.2017.0013 . ПМК   5360932 . ПМИД   28298352 .
  198. ^ Джозеф Р., Кейхани Н.О. (2021). «Грибковые мутуализмы и патосистемы: жизнь и смерть микангии жука-амброзии». Прикладная микробиология и биотехнология . 105 (9): 3393–3410. дои : 10.1007/s00253-021-11268-0 . ПМИД   33837831 . S2CID   233200379 .
  199. ^ Дикон 2005 , с. 277.
  200. ^ «Энтомологи: чтобы выжить, бразильская безжалостная пчела должна культивировать особый вид гриба» . Sci-News.com . 23 октября 2015 г. Архивировано из оригинала 25 октября 2015 г. Проверено 25 октября 2015 г.
  201. ^ Нгуен Н.Х., Су СО, Блэквелл М. (2007). «Пять новых видов Candida в кладах дрожжей, связанных с насекомыми, выделенных из Neuroptera и других насекомых» . Микология . 99 (6): 842–58. дои : 10.3852/микология.99.6.842 . ПМИД   18333508 . Архивировано из оригинала 7 мая 2017 года . Проверено 5 июля 2011 г.
  202. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Филипиак М., Вайнер Дж. (март 2017 г.). «Динамика питания в процессе развития жуков-ксилофагов, связанная с изменением стехиометрии 11 элементов» . Физиологическая энтомология . 42 (1): 73–84. дои : 10.1111/phen.12168 .
  203. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Улышен М.Д. (2018). «Динамика питательных веществ при разложении мертвой древесины в контексте потребностей лесоядных: экологическая стехиометрия насекомых-сапроксилофагов». Сапроксильные насекомые . Зоологические монографии. Том. 1. Спрингер, Чам. стр. 429–469. дои : 10.1007/978-3-319-75937-1_13 . ISBN  978-3-319-75937-1 .
  204. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Улышен М.Д. (2018). «Взаимодействие насекомых и грибков в системах валежной древесины». Сапроксильные насекомые . Зоологические монографии. Том. 1. Спрингер, Чам. стр. 377–427. дои : 10.1007/978-3-319-75937-1_12 . ISBN  978-3-319-75936-4 .
  205. ^ Филипьяк М., Собчик Л., Вайнер Дж. (2016). «Грибная трансформация пней в подходящий ресурс для жуков-ксилофагов за счет изменения соотношения элементов» . Насекомые . 7 (2): 13. doi : 10.3390/insects7020013 . ПМЦ   4931425 .
  206. ^ Яковлев Ю (2012). «Грибные хозяева мицетофилид (Diptera: Sciaroidea, исключая Sciaridae): обзор» . Микология . 3 (1): 11–23. дои : 10.1080/21501203.2012.662533 . S2CID   82107953 .
  207. ^ Фернандес Дж., Орт К. (2018). «Восстание зернового убийцы: биология биотрофного роста Magnaporthe oryzae » . Тенденции в микробиологии . 26 (7): 582–597. дои : 10.1016/j.tim.2017.12.007 . ПМК   6003838 . ПМИД   29395728 .
  208. ^ Сантини А, Баттисти А (2019). «Сложные взаимодействия насекомых и патогенов при пандемиях деревьев» . Границы в физиологии . 10 : 550. doi : 10.3389/fphys.2019.00550 . ПМК   6517489 . ПМИД   31133880 .
  209. ^ Риглинг Д., Просперо С. (2018). « Cryphonectria parasitica , возбудитель фитофтороза каштана: история инвазии, биология популяции и борьба с болезнями» . Молекулярная патология растений . 19 (1): 7–20. дои : 10.1111/mpp.12542 . ПМК   6638123 . ПМИД   28142223 .
  210. ^ Ян Ю, Ян Э, Ан З, Лю Икс (май 2007 г.). «Эволюция клеток-ловушек нематод хищных грибов Orbiliaceae на основе данных, кодирующих рРНК, и мультибелковых последовательностей» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 104 (20): 8379–84. Бибкод : 2007PNAS..104.8379Y . дои : 10.1073/pnas.0702770104 . ЧВК   1895958 . ПМИД   17494736 .
  211. ^ Коек М., Хардхэм А., Доддс, П.Н. (2011). «Роль эффекторов биотрофных и гемибиотрофных грибов в инфекции» . Клеточная микробиология . 13 (12): 1849–1857. дои : 10.1111/j.1462-5822.2011.01665.x . ПМК   3218205 . ПМИД   21848815 .
  212. ^ « Asterotremella gen. nov. albida , анаморфные тремеллоидные дрожжи, выделенные из грибов Asterophora lycoperdoides и Asterophora parasitica » . Проверено 19 апреля 2019 г. - через ResearchGate .
  213. ^ Нильсен К., Хейтман Дж. (2007). «Пол и вирулентность патогенных грибов человека». Грибковая геномика . Достижения генетики. Том. 57. Эльзевир. стр. 143–73. дои : 10.1016/S0065-2660(06)57004-X . ISBN  978-0-12-017657-1 . ПМИД   17352904 .
  214. ^ Брахаге А.А. (декабрь 2005 г.). «Системные грибковые инфекции, вызванные видами Aspergillus: эпидемиология, инфекционный процесс и факторы вирулентности». Текущие цели по борьбе с наркотиками . 6 (8): 875–86. дои : 10.2174/138945005774912717 . ПМИД   16375671 .
  215. ^ Кауфман, Калифорния (январь 2007 г.). «Гистоплазмоз: клинические и лабораторные данные» . Обзоры клинической микробиологии . 20 (1): 115–32. дои : 10.1128/CMR.00027-06 . ПМЦ   1797635 . ПМИД   17223625 .
  216. ^ Кушон М.Т., Смулиан А.Г., Славен Б.Е., Сестерхенн Т., Арнольд Дж., Стабен С. и др. (2007). «Транскриптом Pneumocystis carinii во время молниеносной инфекции: углеводный обмен и концепция совместимого паразита» . ПЛОС ОДИН . 2 (5): е423. Бибкод : 2007PLoSO...2..423C . дои : 10.1371/journal.pone.0000423 . ПМК   1855432 . ПМИД   17487271 .
  217. ^ Кук Г.К., Зумла А.И. (2008). Тропические болезни Мэнсона: консультация эксперта . Эдинбург, Шотландия: Saunders Ltd. 347. ИСБН  978-1-4160-4470-3 .
  218. ^ Саймон-Ноббе Б., Денк У., Полл В., Рид Р., Брайтенбах М. (2008). «Спектр грибковой аллергии» . Международный архив аллергии и иммунологии . 145 (1): 58–86. дои : 10.1159/000107578 . ПМИД   17709917 .
  219. ^ Тамбугала К.М., Даранагама Д.А., Филлипс А.Дж., Каннангара С.Д., Промпутта I (2020). «Грибы против грибов в биоконтроле: обзор грибковых антагонистов, применяемых против грибковых патогенов растений» . Границы клеточной и инфекционной микробиологии . 10 : 604923. дои : 10.3389/fcimb.2020.604923 . ПМК   7734056 . ПМИД   33330142 .
  220. ^ Пирсон М.Н., Бивер Р.Э., Бойн Б., Артур К. (январь 2009 г.). «Миковирусы нитчатых грибов и их значение для патологии растений» . Молекулярная патология растений . 10 (1): 115–28. дои : 10.1111/j.1364-3703.2008.00503.x . ПМК   6640375 . ПМИД   19161358 .
  221. ^ Бозарт РФ (октябрь 1972 г.). «Миковирусы: новое измерение в микробиологии» . Перспективы гигиены окружающей среды . 2 (1): 23–39. дои : 10.1289/ehp.720223 . ПМЦ   1474899 . ПМИД   4628853 .
  222. ^ Адамацкий А (2022). «Язык грибов возник на основе их электрической активности» . Королевское общество открытой науки . 9 (4): 211926. arXiv : 2112.09907 . Бибкод : 2022RSOS....911926A . дои : 10.1098/rsos.211926 . ПМЦ   8984380 . ПМИД   35425630 .
  223. ^ ЭЛЬБЕЙН С. (6 июня 2023 г.). «Грибы могут предложить потрясающее решение проблемы изменения климата» . Холм . Проверено 6 июня 2023 г.
  224. ^ «Грибки накапливают треть углерода, образующегося в результате выбросов ископаемого топлива, и могут иметь важное значение для достижения чистого нуля, показывает новое исследование» . ЭврекАлерт . УНИВЕРСИТЕТ ШЕФФИЛДА . Проверено 6 июня 2023 г.
  225. ^ Шардл К.Л., Панакчоне Д.Г., Тудзинский П. (2006). Глава 2 Алкалоиды спорыньи – биология и молекулярная биология . Алкалоиды: химия и биология. Том. 63. Эльзевир. стр. 45–86. дои : 10.1016/S1099-4831(06)63002-2 . ISBN  978-0-12-469563-4 . ПМИД   17133714 .
  226. ^ Яник Э., Немцевич М., Черемуга М., Стела М., Салук-Бияк Дж., Сиадковски А. и др. (2020). «Молекулярные аспекты микотоксинов — серьезная проблема для здоровья человека» . Международный журнал молекулярных наук . 21 (21): 8187. doi : 10.3390/ijms21218187 . ПМЦ   7662353 . ПМИД   33142955 .
  227. ^ Демейн А.Л., Фанг А. (2000). «Естественные функции вторичных метаболитов». История современной биотехнологии I. Достижения в области биохимической инженерии/биотехнологии. Том. 69. Берлин, Гейдельберг: Шпрингер. стр. 1–39. дои : 10.1007/3-540-44964-7_1 . ISBN  978-3-540-67793-2 . ПМИД   11036689 .
  228. ^ Рольфс М., Альберт М., Келлер Н.П., Кемпкен Ф. (октябрь 2007 г.). «Вторичные химикаты защищают плесень от грибков» . Письма по биологии . 3 (5): 523–5. дои : 10.1098/rsbl.2007.0338 . ПМК   2391202 . ПМИД   17686752 .
  229. ^ Молина Л., Кахманн Р. (июль 2007 г.). « ген Ustilago maydis , участвующий в детоксикации H 2 O 2 Для вирулентности необходим » . Растительная клетка . 19 (7): 2293–309. дои : 10.1105/tpc.107.052332 . ЧВК   1955693 . ПМИД   17616735 .
  230. ^ Кожич М., Чжоу К., Лисби М., Холломан В.К. (январь 2006 г.). «Взаимодействие Rec2 с Brh2 и Rad51 уравновешивает рекомбинационное восстановление у Ustilago maydis » . Молекулярная и клеточная биология . 26 (2): 678–88. дои : 10.1128/MCB.26.2.678-688.2006 . ПМК   1346908 . ПМИД   16382157 .
  231. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Мишод Р.Э., Бернштейн Х., Недельку А.М. (май 2008 г.). «Адаптивное значение пола у микробных патогенов» (PDF) . Инфекция, генетика и эволюция . 8 (3): 267–85. Бибкод : 2008InfGE...8..267M . дои : 10.1016/j.meegid.2008.01.002 . ПМИД   18295550 . Архивировано (PDF) из оригинала 16 мая 2017 года . Проверено 22 июля 2013 г.
  232. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Фан В., Краус П.Р., Бойли М.Дж., Хейтман Дж. (август 2005 г.). « Экспрессия гена Cryptococcus neoformans во время инфекции макрофагов мышей» . Эукариотическая клетка . 4 (8): 1420–33. doi : 10.1128/EC.4.8.1420-1433.2005 . ПМЦ   1214536 . ПМИД   16087747 .
  233. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Лин X, Халл CM, Хейтман Дж (апрель 2005 г.). «Половое размножение между партнерами одного типа спаривания у Cryptococcus neoformans ». Природа . 434 (7036): 1017–21. Бибкод : 2005Natur.434.1017L . дои : 10.1038/nature03448 . ПМИД   15846346 . S2CID   52857557 .
  234. ^ Финчем-младший (март 1989 г.). «Превращение в грибах» . Микробиологические обзоры . 53 (1): 148–70. дои : 10.1128/MMBR.53.1.148-170.1989 . ПМЦ   372721 . ПМИД   2651864 .
  235. ^ Багбан Р., Фараджния С., Раджабибазл М., Гасеми Й., Мафи А., Хосейнпур Р. и др. (2019). «Системы экспрессии дрожжей: обзор и последние достижения» . Молекулярная биотехнология . 61 (5): 365–384. дои : 10.1007/s12033-019-00164-8 . ПМИД   30805909 . S2CID   73501127 .
  236. ^ Хуан Б., Го Дж., И Б., Юй Х., Сунь Л., Чен В. (июль 2008 г.). «Гетерологичное производство вторичных метаболитов в качестве фармацевтических препаратов у Saccharomyces cerevisiae ». Письма о биотехнологиях . 30 (7): 1121–37. дои : 10.1007/s10529-008-9663-z . ПМИД   18512022 . S2CID   2222358 .
  237. ^ Мейер В., Басенко Е.Ю., Бенц Дж.П., Браус Г.Х., Кэддик М.Х., Чукай М. и др. (2 апреля 2020 г.). «Развитие экономики замкнутого цикла с помощью грибковой биотехнологии: официальный документ» . Грибковая биология и биотехнология . 7 (1): 5. дои : 10.1186/s40694-020-00095-z . ISSN   2054-3085 . ПМК   7140391 . ПМИД   32280481 . S2CID   215411291 .
  238. ^ Джонс М., Гандиа А., Джон С., Бисмарк А. (январь 2021 г.). «Биопроизводство кожаных материалов с использованием грибов». Устойчивость природы . 4 (1): 9–16. дои : 10.1038/s41893-020-00606-1 . ISSN   2398-9629 . S2CID   221522085 .
  239. ^ «Заменители мяса на растительной основе – продукты с потенциалом будущего | Bioökonomie.de» . biooekonomie.de . Проверено 25 мая 2022 г.
  240. ^ Берлин KC, биотехнология, Artists HC, Artists H (28 января 2022 г.). «Грибные заменители мяса: краткий обзор патентов» . По биологии . Проверено 25 мая 2022 г.
  241. ^ Ланге Л. (декабрь 2014 г.). «Важность грибов и микологии для решения основных глобальных проблем*» . ИМА Гриб . 5 (2): 463–471. дои : 10.5598/imafungus.2014.05.02.10 . ISSN   2210-6340 . ПМЦ   4329327 . ПМИД   25734035 .
  242. ^ Патак А., Ноуэлл Р.В., Уилсон К.Г., Райан М.Дж., Барракло Т.Г. (сентябрь 2020 г.). Александра Флеминга «Сравнительная геномика оригинального изолята Penicillium (IMI 15378) выявляет расхождение последовательностей генов синтеза пенициллина» . Научные отчеты . 10 (1): Статья 15705. Бибкод : 2020НацСР..1015705П . дои : 10.1038/s41598-020-72584-5 . ПМЦ   7515868 . ПМИД   32973216 .
  243. ^ Брахаге А.А., Спруте П., Аль-Абдалла К., Герке А., Платтнер Х., Тюнчер А. (2004). «Регуляция биосинтеза пенициллина у нитчатых грибов». Молекулярная биотехнология грибковых бета-лактамных антибиотиков и родственных пептидсинтетаз . Достижения в области биохимической инженерии/биотехнологии. Том. 88. Берлин, Гейдельберг: Шпрингер. стр. 45–90. дои : 10.1007/b99257 . ISBN  978-3-540-22032-9 . ПМИД   15719552 .
  244. ^ Пан А., Лоренцотти С., Зонкада А. (январь 2008 г.). «Зарегистрированные и исследуемые препараты для лечения метициллинрезистентной инфекции Staphylococcus aureus ». Недавние патенты на открытие противоинфекционных препаратов . 3 (1): 10–33. дои : 10.2174/157489108783413173 . ПМИД   18221183 .
  245. ^ Фахардо А., Мартинес Х.Л. (апрель 2008 г.). «Антибиотики как сигналы, вызывающие специфические бактериальные реакции». Современное мнение в микробиологии . 11 (2): 161–7. дои : 10.1016/j.mib.2008.02.006 . ПМИД   18373943 .
  246. ^ Лоо Д.С. (2006). «Системные противогрибковые средства: обновление существующих и новых методов лечения». Достижения дерматологии . 22 : 101–24. дои : 10.1016/j.yadr.2006.07.001 . ПМИД   17249298 .
  247. ^ Манцони М., Роллини М. (апрель 2002 г.). «Биосинтез и биотехнологическое производство статинов мицелиальными грибами и применение этих препаратов, снижающих уровень холестерина». Прикладная микробиология и биотехнология . 58 (5): 555–64. дои : 10.1007/s00253-002-0932-9 . ПМИД   11956737 . S2CID   5761188 .
  248. ^ Доус Р.Э., Тиммерманн С., Гирибальди Б., Секстон Дж.Д., Уолл М.Б., Эрритцо Д. и др. (апрель 2022 г.). «Увеличенная глобальная интеграция в мозге после терапии депрессии псилоцибином» . Природная медицина . 28 (4): 844–851. дои : 10.1038/s41591-022-01744-z . hdl : 10044/1/95521 . ISSN   1546-170Х . ПМИД   35411074 . S2CID   248099554 .
  249. ^ Эль-Меккави С., Меселхи М.Р., Накамура Н., Тезука Й., Хаттори М., Какиучи Н. и др. (ноябрь 1998 г.). «Анти-ВИЧ-1 и анти-ВИЧ-1-протеазные вещества из Ganoderma lucidum ». Фитохимия . 49 (6): 1651–7. Бибкод : 1998PChem..49.1651E . дои : 10.1016/S0031-9422(98)00254-4 . ПМИД   9862140 .
  250. ^ Эль Дайн Р.С., Эль Халавани А.М., Ма К.М., Хаттори М. (июнь 2008 г.). «Анти-ВИЧ-1 протеазная активность тритерпенов ланостана из вьетнамского гриба Ganoderma colossum ». Журнал натуральных продуктов . 71 (6): 1022–6. дои : 10.1021/np8001139 . ПМИД   18547117 .
  251. Перейти обратно: Перейти обратно: а б Хетланд Г., Джонсон Э., Либерг Т., Бернардшоу С., Триггестад А.М., Гринде Б. (октябрь 2008 г.). «Влияние лекарственного гриба Agaricus blazei Murill на иммунитет, инфекцию и рак» . Скандинавский журнал иммунологии . 68 (4): 363–70. дои : 10.1111/j.1365-3083.2008.02156.x . ПМИД   18782264 . S2CID   3866471 .
  252. ^ Салливан Р., Смит Дж. Э., Роуэн, Нью-Джерси (2006). «Лекарственные грибы и терапия рака: перевод традиционной практики в западную медицину». Перспективы биологии и медицины . 49 (2): 159–70. дои : 10.1353/pbm.2006.0034 . ПМИД   16702701 . S2CID   29723996 .
  253. ^ Халперн Г.М., Миллер А. (2002). Лекарственные грибы: древние средства лечения современных недугов . Нью-Йорк, Нью-Йорк: М. Эванс и компания. 116. ИСБН  978-0-87131-981-4 .
  254. ^ Фриц Х., Кеннеди Д.А., Исии М., Фергюссон Д., Фернандес Р., Кули К. и др. (2015). «Экстракты полисахарида К и кориолуса разноцветного при раке легких» . Интегративная терапия рака . 14 (3): 201–211. дои : 10.1177/1534735415572883 . ПМИД   25784670 .
  255. ^ Фиренцуоли Ф, Гори Л, Ломбардо Дж (март 2008 г.). «Лекарственный гриб Agaricus blazei Murrill: обзор литературы и фармако-токсикологических проблем» . Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 5 (1): 3–15. дои : 10.1093/ecam/nem007 . ПМК   2249742 . ПМИД   18317543 .
  256. ^ Лу Дж., Хэ Р., Сунь П., Чжан Ф., Линхардт Р.Дж., Чжан А. (2020). «Молекулярные механизмы биоактивных полисахаридов Ganoderma lucidum (Lingzhi), обзор». Международный журнал биологических макромолекул . 150 : 765–774. doi : 10.1016/j.ijbiomac.2020.02.035 . ПМИД   32035956 . S2CID   211071754 .
  257. ^ Олатунджи О.Дж., Тан Дж., Тола А., Оберон Ф., Олуванийи О., Оуян З. (2018). «Род Кордицепс : обширный обзор его традиционного использования, фитохимии и фармакологии». Фитотерапия . 129 : 293–316. дои : 10.1016/j.fitote.2018.05.010 . ПМИД   29775778 . S2CID   21741034 .
  258. ^ Кулп К (2000). Справочник по науке и технологии зерна . ЦРК Пресс . ISBN  978-0-8247-8294-8 .
  259. ^ Пискур Дж., Розпедовска Е., Полакова С., Мерико А., Компаньо С. (апрель 2006 г.). «Как Saccharomyces превратились в хорошего пивовара?». Тенденции в генетике . 22 (4): 183–6. дои : 10.1016/j.tig.2006.02.002 . ПМИД   16499989 .
  260. ^ Абэ К., Гоми К., Хасегава Ф., Мачида М. (сентябрь 2006 г.). «Влияние геномики Aspergillus oryzae на промышленное производство метаболитов». Микопатология . 162 (3): 143–53. дои : 10.1007/s11046-006-0049-2 . ПМИД   16944282 . S2CID   36874528 .
  261. ^ Хачмейстер К.А., Фунг Д.Ю. (1993). «Темпе: модифицированная плесенью местная ферментированная пища, приготовленная из соевых бобов и / или зерновых культур». Критические обзоры по микробиологии . 19 (3): 137–88. дои : 10.3109/10408419309113527 . ПМИД   8267862 .
  262. ^ Йоргенсен Т.Р. (декабрь 2007 г.). «Идентификация и токсигенный потенциал промышленно важных грибов Aspergillus oryzae и Aspergillus sojae » . Журнал защиты пищевых продуктов . 70 (12): 2916–34. дои : 10.4315/0362-028X-70.12.2916 . ПМИД   18095455 .
  263. ^ О'Доннелл К., Цигельник Э., Каспер Х.Х. (февраль 1998 г.). «Молекулярно-филогенетические, морфологические данные и данные о микотоксинах подтверждают повторную идентификацию микопротеинового гриба Quorn как Fusarium venenatum ». Грибковая генетика и биология . 23 (1): 57–67. дои : 10.1006/fgbi.1997.1018 . ПМИД   9501477 . S2CID   23049409 .
  264. ^ Стамец П (2000). Выращивание деликатесных и лекарственных грибов [ Сёкуё ойоби якуё киноко но сайбай ]. Беркли, Калифорния: Десятискоростной пресс. стр. 233–248. ISBN  978-1-58008-175-7 .
  265. ^ Холл 2003 , стр. 13–26.
  266. ^ Кинселла Дж. Э., Хван Д. Х. (ноябрь 1976 г.). «Ферменты Penicillium roqueforti, участвующие в биосинтезе сырного аромата». Критические обзоры в области пищевой науки и питания . 8 (2): 191–228. дои : 10.1080/10408397609527222 . ПМИД   21770 .
  267. ^ Эрдоган А., Гюрсес М., Серт С. (август 2003 г.). «Выделение плесени, способной продуцировать микотоксины, из сыров Тулум с голубой плесенью, произведенных в Турции». Международный журнал пищевой микробиологии . 85 (1–2): 83–5. дои : 10.1016/S0168-1605(02)00485-3 . ПМИД   12810273 .
  268. ^ Орр Д.Б., Орр РТ (1979). Грибы западной части Северной Америки . Беркли, Калифорния: Издательство Калифорнийского университета . п. 17. ISBN  978-0-520-03656-7 .
  269. ^ Веттер Дж. (январь 1998 г.). «Токсины мухомора фаллоидного ». Токсикон . 36 (1): 13–24. дои : 10.1016/S0041-0101(97)00074-3 . ПМИД   9604278 .
  270. ^ Литем А.М., Дорран Т.Дж. (март 2007 г.). «Отравление сырым Gyromitra esculenta (ложные сморчки) к западу от Скалистых гор» . Канадский журнал неотложной медицины . 9 (2): 127–30. дои : 10.1017/s1481803500014937 . ПМИД   17391587 .
  271. ^ Карлсон-Стибер С., Перссон Х. (сентябрь 2003 г.). «Цитотоксические грибы - обзор». Токсикон . 42 (4): 339–49. дои : 10.1016/S0041-0101(03)00238-1 . ПМИД   14505933 .
  272. ^ Мишло Д., Мелендес-Хауэлл Л.М. (февраль 2003 г.). « Amanita muscaria : химия, биология, токсикология и этномикология». Микологические исследования . 107 (Часть 2): 131–46. дои : 10.1017/S0953756203007305 . ПМИД   12747324 . S2CID   41451034 .
  273. ^ Холл 2003 , с. 7.
  274. ^ Аммирати Дж. Ф., Маккенни М., Станц Д. Е. (1987). Новый пикантный лесной гриб . Сиэтл, Вашингтон: Вашингтонский университет Press . стр. XII – XIII. ISBN  978-0-295-96480-5 .
  275. ^ Лопес-Гомес Дж., Молина-Мейер М. (февраль 2006 г.). «Принцип конкурентного исключения против биоразнообразия посредством конкурентной сегрегации и дальнейшей адаптации к пространственным неоднородностям». Теоретическая популяционная биология . 69 (1): 94–109. дои : 10.1016/j.tpb.2005.08.004 . ПМИД   16223517 .
  276. ^ Беккер Х (1998). «Подготавливаем почву для скрининга грибов биоконтроля» . Министерство сельского хозяйства США , Служба сельскохозяйственных исследований. Архивировано из оригинала 16 января 2009 года . Проверено 23 февраля 2009 г.
  277. ^ Чендлер Д. (2017). «Фундаментальные и прикладные исследования энтомопатогенных грибов». В Лейси Лос-Анджелес (ред.). Микробиологическая борьба с насекомыми и клещами-вредителями . Академическая пресса . стр. 69–89. дои : 10.1016/B978-0-12-803527-6.00005-6 . ISBN  978-0-12-803527-6 .
  278. ^ Дешпанде М.В. (1999). «Производство микопестицидов путем ферментации: потенциал и проблемы». Критические обзоры по микробиологии . 25 (3): 229–43. дои : 10.1080/10408419991299220 . ПМИД   10524330 .
  279. ^ Томас МБ, Рид AF (май 2007 г.). «Могут ли грибковые биопестициды контролировать малярию?». Обзоры природы. Микробиология . 5 (5): 377–83. дои : 10.1038/nrmicro1638 . HDL : 1842/2089 . ПМИД   17426726 . S2CID   14460348 .
  280. ^ Герр П (2015). «Алкалоиды спорыньи, продуцируемые эндофитными грибами рода Epichloë » . Токсины . 7 (3): 773–790. дои : 10.3390/toxins7030773 . ПМЦ   4379524 . ПМИД   25756954 .
  281. ^ Бутон Дж.Х., Лэтч Г.С., Хилл Н.С., Хоувленд К.С., Макканн М.А., Уотсон Р.Х. и др. (2002). «Реинфекция сортов овсяницы высокорослой эндофитами, не продуцирующими алкалоиды спорыньи» . Агрономический журнал . 94 (3): 567–574. Бибкод : 2002AgrJ...94..567B . дои : 10.2134/agronj2002.5670 . Архивировано из оригинала 21 июля 2018 года . Проверено 21 мая 2020 г.
  282. ^ Пэриш Дж.А., Макканн М.А., Уотсон Р.Х., Хоувленд К.С., Хокинс Л.Л., Хилл Н.С. и др. (май 2003 г.). «Использование эндофитов, продуцирующих алкалоиды спорыньи, для облегчения токсикоза овсяницы тростниковой у овец». Журнал зоотехники . 81 (5): 1316–22. дои : 10.2527/2003.8151316x . ПМИД   12772860 .
  283. ^ Чжо Р., Фань Ф (2021). «Всестороннее представление о применении грибов белой гнили и их лигноцеллюлолитических ферментов для удаления органических загрязнителей». Наука об общей окружающей среде . 778 : 146132. Бибкод : 2021ScTEn.77846132Z . doi : 10.1016/j.scitotenv.2021.146132 . ПМИД   33714829 . S2CID   232230208 .
  284. ^ «Грибки для борьбы с «токсичными военными зонами» » . Новости Би-би-си . 5 мая 2008 г. Архивировано из оригинала 15 сентября 2017 г. . Проверено 12 мая 2008 г.
  285. ^ Фомина М., Чарнок Дж.М., Хиллиер С., Альварес Р., Гэдд Г.М. (июль 2007 г.). «Грибные превращения оксидов урана». Экологическая микробиология . 9 (7): 1696–710. Бибкод : 2007EnvMi...9.1696F . дои : 10.1111/j.1462-2920.2007.01288.x . ПМИД   17564604 .
  286. ^ Фомина М., Чарнок Дж.М., Хиллиер С., Альварес Р., Ливенс Ф., Гэдд Г.М. (май 2008 г.). «Роль грибов в биогеохимической судьбе обедненного урана» . Современная биология . 18 (9): R375–7. Бибкод : 2008CBio...18.R375F . дои : 10.1016/j.cub.2008.03.011 . ПМИД   18460315 . S2CID   52805144 .
  287. ^ Бидл Г.В., Татум Э.Л. (ноябрь 1941 г.). «Генетический контроль биохимических реакций нейроспоры» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 27 (11): 499–506. Бибкод : 1941ПНАС...27..499Б . дои : 10.1073/pnas.27.11.499 . ПМЦ   1078370 . ПМИД   16588492 .
  288. ^ Датта А., Ганесан К., Натараджан К. (1990). «Современные тенденции в исследованиях Candida albicans». Достижения микробной физиологии, том 30 . Том. 30. Эльзевир. стр. 53–88. дои : 10.1016/S0065-2911(08)60110-1 . ISBN  978-0-12-027730-8 . ПМИД   2700541 .
  289. ^ Дин Р.А., Талбот, Нью-Джерси, Эббол Д.Д., Фарман М.Л., Митчелл Т.К., Орбах М.Дж. и др. (апрель 2005 г.). «Последовательность генома рисового гриба Magnaporthe grisea » . Природа . 434 (7036): 980–6. Бибкод : 2005Natur.434..980D . дои : 10.1038/nature03449 . ПМИД   15846337 .
  290. ^ Карбалаи М., Резаи С.А., Фарсиани Х. (2020). « Pichia Pastoris : весьма успешная система экспрессии для оптимального синтеза гетерологичных белков» . Журнал клеточной физиологии . 235 (9): 5867–5881. дои : 10.1002/jcp.29583 . ПМЦ   7228273 . ПМИД   32057111 .
  291. ^ Шлегель Х.Г. (1993). Общая микробиология . Кембридж, Великобритания: Издательство Кембриджского университета . п. 360. ИСБН  978-0-521-43980-0 .
  292. ^ Джозеф Б., Рамтеке П.В., Томас Г. (2008). «Холодные активные микробные липазы: некоторые острые проблемы и последние разработки». Достижения биотехнологии . 26 (5): 457–70. doi : 10.1016/j.biotechadv.2008.05.003 . ПМИД   18571355 .
  293. ^ Кумар Р., Сингх С., Сингх О.В. (май 2008 г.). «Биоконверсия лигноцеллюлозной биомассы: биохимические и молекулярные перспективы» . Журнал промышленной микробиологии и биотехнологии . 35 (5): 377–91. дои : 10.1007/s10295-008-0327-8 . ПМИД   18338189 . S2CID   4830678 .
  294. ^ « Trichoderma Виды , включая T. harzianum , T. viride , T. koningii , T. hamatum и другие виды. Deuteromycetes, Moniliales (бесполая система классификации)» . Биологический контроль: Путеводитель по естественным врагам в Северной Америке . Архивировано из оригинала 14 апреля 2011 года . Проверено 10 июля 2007 г.
  295. ^ Олемпска-Беер З.С., Меркер Р.И., Дитто М.Д., ДиНови М.Дж. (июль 2006 г.). «Пищевые ферменты из рекомбинантных микроорганизмов – обзор» . Нормативная токсикология и фармакология . 45 (2): 144–158. дои : 10.1016/j.yrtph.2006.05.001 . ПМИД   16769167 . Архивировано из оригинала 3 июля 2019 года . Проверено 3 июля 2019 г.
  296. ^ Полизели М.Л., Риццатти АС, Монти Р., Теренци Х.Ф., Хорхе Х.А., Аморим Д.С. (июнь 2005 г.). «Ксиланазы грибов: свойства и промышленное применение». Прикладная микробиология и биотехнология . 67 (5): 577–91. дои : 10.1007/s00253-005-1904-7 . ПМИД   15944805 . S2CID   22956 .

Цитируемая литература

Дальнейшее чтение

  • Кольберт, Элизабет , «Споры до смерти» (рецензия на Эмили Моноссон , «Blight: Fungi and the Coming Pandemic» , Norton, 253 стр.; и Элисон Пулио , «Встречи с замечательными грибами: набеги грибов по полушариям» , University of Chicago Press, 278). стр.), The New York Review of Books , vol. LXX, № 14 (21 сентября 2023 г.), стр. 41–42. «Грибки вызывают у нас тошноту, а грибы поддерживают нас. В любом случае, мы игнорируем их на свой страх и риск». (стр. 42.)

Внешние ссылки

Arc.Ask3.Ru: конец переведенного документа.
Arc.Ask3.Ru
Номер скриншота №: a7efe550acc309114b5ffe89fc871477__1718157840
URL1:https://arc.ask3.ru/arc/aa/a7/77/a7efe550acc309114b5ffe89fc871477.html
Заголовок, (Title) документа по адресу, URL1:
Fungus - Wikipedia
Данный printscreen веб страницы (снимок веб страницы, скриншот веб страницы), визуально-программная копия документа расположенного по адресу URL1 и сохраненная в файл, имеет: квалифицированную, усовершенствованную (подтверждены: метки времени, валидность сертификата), открепленную ЭЦП (приложена к данному файлу), что может быть использовано для подтверждения содержания и факта существования документа в этот момент времени. Права на данный скриншот принадлежат администрации Ask3.ru, использование в качестве доказательства только с письменного разрешения правообладателя скриншота. Администрация Ask3.ru не несет ответственности за информацию размещенную на данном скриншоте. Права на прочие зарегистрированные элементы любого права, изображенные на снимках принадлежат их владельцам. Качество перевода предоставляется как есть. Любые претензии, иски не могут быть предъявлены. Если вы не согласны с любым пунктом перечисленным выше, вы не можете использовать данный сайт и информация размещенную на нем (сайте/странице), немедленно покиньте данный сайт. В случае нарушения любого пункта перечисленного выше, штраф 55! (Пятьдесят пять факториал, Денежную единицу (имеющую самостоятельную стоимость) можете выбрать самостоятельно, выплаичвается товарами в течение 7 дней с момента нарушения.)